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Western blot化學(xué)發(fā)光(ECL)時,出現(xiàn)非特異條帶

seven7r 2018-04-04 17:31:32 351  瀏覽
  • Western blot化學(xué)發(fā)光(ECL)時,出現(xiàn)非特異條帶,應(yīng)該怎么辦?


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  • *羯之星 2018-04-04 17:53:18
    出現(xiàn)雜帶或非特異條帶的原因可能有以下幾個方面: 1. 蛋白上樣量過大??山档偷鞍咨蠘恿?。 2. 一抗是多克隆抗體,或一抗、二抗?jié)舛忍?。可更換成單克隆抗體,或降低抗體濃度,縮短抗體孵育時間,優(yōu)化一抗和二抗的使用濃度。 3. 洗膜不充分??稍黾酉茨ご螖?shù)和Buffer用量,延長洗膜時間,或在Wash Buffer中添加終濃度0.05%的Tween-20。 4. 目的蛋白在體內(nèi)存在多種修飾形式,如乙?;?,甲基化,磷酸化,糖基化等??刹殚單墨I,用合適的方法去除蛋白的修飾,或選擇合適的抗體。 5. 目的蛋白降解。重新準(zhǔn)備蛋白樣品,并加入足夠的蛋白酶YZ劑。 6. 發(fā)光液質(zhì)量問題,可選用發(fā)光清晰的ECL發(fā)光液,如英格恩的Enlight。

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Western blot化學(xué)發(fā)光(ECL)時,出現(xiàn)非特異條帶

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美國ProteinSimple公司首推基于芯片Western Blot技術(shù),進行單個細胞蛋白質(zhì)表達水平定


量分析系統(tǒng): Milo.

Milo具有極其強大的功能:

1. 單張芯片進行1000個單細胞western blot

2. 每個單細胞可進行數(shù)十個靶蛋白檢測

3. 僅需使用Western blot驗證抗體,具有抗體通用性

4. 基于western blot技術(shù),蛋白進行分離后檢測,提高免疫學(xué)檢測特異性

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期刊對Western Blot數(shù)據(jù)要求:

1. 內(nèi)參和目的蛋白在同一張印跡膜上;

2. zuihao選擇膜染色進行總蛋白歸一化;

3. 如果使用看家蛋白,需要提供看家蛋白表達穩(wěn)定并且不受實驗條件影響的證據(jù);

4. 成像方法的線性范圍需要提供。

看家蛋白一般常用于內(nèi)參質(zhì)控,整張膜上的weiyi質(zhì)控標(biāo)準(zhǔn),但是看家蛋白一般表達量比較高,可能與目的蛋白不在一個線性范圍內(nèi),影響定量;并且看家蛋白證明在多種實驗條件下是會發(fā)生變化,例如:細胞融合,疾病和藥物ZL等等,影響定量jingzhun性。

總蛋白質(zhì)控直接在膜上檢測總蛋白,變異性小,誤差小,動態(tài)范圍更寬,使用整個泳道或泳道中大部分信號用于歸一化,而不是單一的條帶,例如JBC、Nature和Proteomics等期刊推薦使用總蛋白進行歸一化。

Azure可提供一站式Western Blot歸一化解決方案。

提供兩種總蛋白染色試劑Azure Red和TotalStainQ進行膜染色和總蛋白歸一化,AzureRed適合低豐度表達樣品,TotalStain更適合細胞裂解液樣品。

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Azure成像系統(tǒng)除了可進行Western Blot成像外,功能非常強大,可進行凝膠、In cell Western孔板成像、2D和2D-DIGE、微陣列芯片、切片、動植物組織、小鼠成像、放射性同位素磷屏成像等。

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Western Blot歸一化:看家蛋白or總蛋白

做Western Blot的小伙伴,是不是還在為歸一化方法而糾結(jié)呢?今天小編就和大家匯總一下看家蛋白和總蛋白歸一化的方法。

看家蛋白歸一化

使用看家蛋白的缺點是在樣品間和不同條件下表達水平可能不一致。如使用看家蛋白進行標(biāo)準(zhǔn)化,必須先花費時間和精力來驗證內(nèi)參的選擇。

使用看家蛋白的第二個重大挑戰(zhàn)是它們的表達豐度很高,如果樣品中的看家蛋白表達非常高,這會限制在凝膠上加載的樣品量,如果感興趣的蛋白不是同樣的表達豐度,那這兩種蛋白質(zhì)就不在同一線性檢測范圍內(nèi)。

如果您正在進行多重蛋白印跡,例如比較同一蛋白質(zhì)的磷酸化和非磷酸化形式,則需要考慮的第三個挑戰(zhàn)是從不同物種中產(chǎn)生一抗和二抗的復(fù)雜性。

檢測的看家蛋白可能干擾感興趣蛋白的檢測。理想情況下,看家蛋白應(yīng)該與感興趣蛋白的大小不同,因此這兩種蛋白可在印跡上空間分辨。當(dāng)實驗在同一印跡上檢查多種目的蛋白時,這就變得越來越困難。


總蛋白歸一化


使用總蛋白歸一化,是直接在膜上檢測總蛋白,并且該值在歸一化時用作分母??偟鞍兹旧峁└鼘挼膭討B(tài)范圍,并且表現(xiàn)出比看家蛋白更低的可變性和更準(zhǔn)確的定量數(shù)據(jù)。

與使用看家蛋白相比,圖像采集后的分析工作流程基本不變; 整個泳道或泳道中大部分信號用于歸一化,而不是單一的條帶。

例如:JBC、Narute和Proteomics等期刊會推薦使用總蛋白歸一化方法。

使用總蛋白染色劑對膜進行染色提供了質(zhì)控優(yōu)勢,可以驗證轉(zhuǎn)印是否完全。


Azure提供全套的總蛋白歸一化解決方案。咨詢請撥打:電話:010-57256059



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