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- 伍祖加 2016-12-28 00:00:00
- 是根據(jù)蛋白質(zhì)的電荷不同即酸堿性質(zhì)不同分離蛋白質(zhì)混合物的方法。 1、電泳:在外電場的作用下,帶點顆粒將向著與其電性相反的電極移動,這種現(xiàn)象稱為電泳。電泳技術可用于氨基酸、肽、蛋白質(zhì)和核苷酸等生物分子的分析分離和制備。 區(qū)帶電泳是由于在支持物上電泳蛋白質(zhì)混合物被分離為若干區(qū)帶。 電泳前用緩沖液浸潤薄膜或濾紙等支持物或用緩沖液直接配置成凝膠,將待分離的蛋白質(zhì)樣品加在它的一端或ZY,支持物的兩端與電極連接,通電電泳。電泳完畢,各個組分分布在不同的區(qū)域,用顯色劑(蛋白質(zhì)可用考馬斯亮藍或氨基黑等染色)顯色后可以顯示出各個組分。 氨基酸混合物特別是寡聚核苷酸混合物一次電泳往往不能完全分開。這種情況可以將diyi次電泳分開的斑點通過支持介質(zhì)間的接觸印跡轉移到第二個支持介質(zhì)上,旋轉90°,進行第二次電泳。這種方法稱為雙向電泳。 2、聚丙烯酰胺凝膠電泳:以聚丙烯酰胺凝膠為支持物,一般制成凝膠柱或凝膠板,凝膠是由相連的兩部分組成(小的部分是濃縮膠,大的部分為分離膠),這兩部分凝膠的濃度、緩沖液組分和離子強度、pH以及電場強度都是不同的,即不連續(xù)性。電泳時樣品首先在不連續(xù)的兩相間積聚濃縮而成很薄的起始區(qū)帶,然后再進行電泳分離。 電泳有三種物理效應:1、樣品的濃度效應;2、凝膠對被分離分子的篩選效應;3、一般電泳分離的電荷效應。 3、毛細管電泳:GX毛細管電泳、毛細管區(qū)帶電泳、自由溶液毛細管電泳、毛細管電泳,可分離氨基酸、肽、蛋白質(zhì)、DNA片段和核酸以及多種小分子,也可用于手性化合物的分離。 毛細管減少了由于熱效應產(chǎn)生的許多問題,可以提高熱散失,有助于消除由于熱引起的擴散增加而造成的對流和區(qū)帶變寬,因此管中不需要加入穩(wěn)定介質(zhì)即可進行自由流動電泳。 電泳遷移引起溶液中荷電分子向相反電荷的電極移動,雖然被分析樣品因電泳遷移而分離,然而電滲作用使溶液向負極流動,而且電滲電流很強,其速度一般比樣品的電泳速率答,因此所有的正、負離子和中性分子都被推向負極。對荷正電分子來說,電泳遷移和電滲流效果是一致的,而且移動Z快,Z先達到負極。隨著被分離的分子接近負極,它們都將通過紫外檢測器并把信號傳遞給記錄儀。所得結果是被分離組分的紫外吸收對時間的峰譜。 4、等點聚焦(IEF)分離蛋白質(zhì)混合物是在具有pH梯度的介質(zhì)(如濃蔗糖溶液)中進行。在外電場作用下各種蛋白質(zhì)將移向并聚焦在等于其等電點的梯度處,并形成一個很窄的區(qū)帶。 pH梯度制作一般利用兩性電解質(zhì),它是脂肪族多胺和多羧類的同系物,它們具有相近但不相同的解離常數(shù)和等電點。在外電場作用下,自然形成pH梯度。 5、層析聚焦:根據(jù)蛋白質(zhì)的等電點差異分離蛋白質(zhì)混合物的柱層析方法。 原理:當用特種緩沖液滴洗填充在柱中的特種多緩沖交換劑時,就會在層析柱中自上而下自動的建立起連續(xù)的pH梯度;同時加在柱上端的蛋白質(zhì)樣品也隨多緩沖液的展開按各自的等電點聚焦在相應的pH區(qū)段。并在展開過程中隨pH梯度下移,蛋白質(zhì)混合物的各組分先后從柱中流出,達到分離純化的目的。
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蛋白質(zhì)濃度測定的各種方法及原理是生物化學和分子生物學實驗中的重要環(huán)節(jié)。蛋白質(zhì)濃度的準確測定對于研究生物分子相互作用、蛋白質(zhì)功能和動力學、以及生物樣品的分析和鑒定等方面都具有重要的意義。本文將介紹幾種常用的蛋白質(zhì)濃度測定方法及其原理,包括紫外吸收法、微量凱氏定氮法、雙縮尿法、Lowry 法和考馬斯亮藍法等。通過對這些方法的比較和分析,可以更好地了解它們的優(yōu)缺點,以便根據(jù)實際實驗需求選擇合適的方法來測定蛋白質(zhì)濃度。
①紫外吸收法
檢測原理:
蛋白質(zhì)分子中,酪氨酸、苯丙氨酸和色氨酸殘基的苯環(huán)含有共扼雙鍵,使蛋白質(zhì)具有吸收紫外光的性質(zhì)。吸收高峰在280nm處,其吸光度(即光密度值)與蛋白質(zhì)含量成正比。此外,蛋白質(zhì)溶液在238nm的光吸收值與肽鍵含量成正比。利用一定波長下,蛋白質(zhì)溶液的光吸收值與蛋白質(zhì)濃度的正比關系,進行蛋白質(zhì)含量的測定。
方法特點:
優(yōu)點:簡便、靈敏、快速,不消耗樣品,測定后仍能回收使用。
缺點:測定蛋白質(zhì)含量的準確度較差,干擾物質(zhì)多。
干擾物:含有嘌呤、嘧啶、核酸等吸收紫外光的物質(zhì)。
檢出限:50~100ug蛋白含量。
適用范圍:適于用測定與標準蛋白質(zhì)氨基酸組成相似的蛋白質(zhì)。
②微量凱氏定氮法
凱氏定氮法被國內(nèi)外視為蛋白質(zhì)含量的標準檢驗方法,可作為衡量其他蛋白質(zhì)含量檢測方法準確性的標準。
實驗原理:
樣品與濃硫酸共熱,含氮有機物即分解產(chǎn)生氨(消化),氨又與硫酸作用,變成硫酸氨。經(jīng)強堿堿化使之分解放出氨,借蒸汽將氨蒸至酸液中,根據(jù)此酸液被中和的程度可計算得樣品之氮含量。
方法特點:
優(yōu)點:通用性強,測定費用低,易實現(xiàn),儀器簡單且測定結果的重復性和重現(xiàn)性好。
缺點:實驗耗時長、靈敏度低。
檢出限:0.2~1mg蛋白含量。
適用范圍:凱氏定氮法測的是總蛋白的量,一些非蛋白氮無法檢測出。
③雙縮尿法
實驗原理:
雙縮尿(NH3CONHCONH3)是兩個分子經(jīng)180℃左右加熱,放出一個分子氨后得到的產(chǎn)物。在強堿溶液中,雙縮尿與CuSO4形成紫色絡合物,稱為雙縮尿反應。凡具有兩個酰胺基或兩個直接連接的肽鏈,或能過一個中間碳原子相連的肽鍵,這類化合物都有雙縮尿反應。紫色絡合物顏色的深淺與蛋白質(zhì)濃度成正比,與蛋白質(zhì)分子量及氨基酸成分無關。
方法特點:
優(yōu)點:適合檢測總蛋白質(zhì)的含量,操作簡單、測量速度快。
缺點:標準物質(zhì)必須使用代表性很強的樣品,需使用其他參考方法測出標準物質(zhì)中的蛋白質(zhì)總含量,故測定工作費力費時。不宜測定樣品種類多、彼此差異大的樣品。
檢出限:測定蛋白質(zhì)含量測定范圍為1-20mg蛋白質(zhì)。
干擾物:硫酸銨、Tris緩沖液和某些氨基酸等。
適用范圍:常用于需要快速,但并不需要十分精確的蛋白質(zhì)測定。
④Lowry 法
Lowry 法是雙縮脲法的發(fā)展,結合了雙縮脲試劑和酚試劑與蛋白質(zhì)的反應,是最靈敏的蛋白質(zhì)測定方法之一,在生物化學領域得到廣泛的應用,目前分為基本法和改良簡易法,改良簡易法可獲得與基本法相近的結果。
基本法實驗原理:
顯色原理與雙縮尿法相同,但加入了Folin-酚酞試劑,以增加顯色量,從而提高檢測蛋白質(zhì)的靈敏度。這兩種顯色反應產(chǎn)生深蘭色的原因是:①在堿性條件下,蛋白質(zhì)中的肽鍵與銅結合生成復合物。②Folin一酚試劑中的磷鉬酸鹽一磷鎢酸鹽被蛋白質(zhì)中的酪氨酸和苯丙氨酸殘基還原,產(chǎn)生深蘭色(鉬蘭和鎢蘭的混合物)。在一定的條件下,蘭色深度與蛋白的量成正比。
特點:
優(yōu)點:靈敏度高。
缺點:耗費時間長,操作時間需精-準控制,標準曲線繪制麻煩,專一性較差,干擾物質(zhì)比較多。
檢出限:可檢測的最-低蛋白質(zhì)量達5ug。通常測定范圍是20~250ug。
干擾物:酚類、檸檬酸、硫酸銨、Tris緩沖液、甘氨酸、糖類、甘油等。
適用范圍:除蛋白含量測定,也可用于酪氨酸和色氨酸的定量測定。
⑤考馬斯亮藍法
實驗原理:
考馬斯亮藍G-250染料,在酸性溶液中與蛋白質(zhì)結合,使染料的最-大吸收峰的位置(max),由465mm變?yōu)?95nm,溶液的顏色也由棕黑色變?yōu)樗{色。經(jīng)研究認為,染料主要是與蛋白質(zhì)中的堿性氨基酸(特別是精氨酸)和芳香族氨基酸殘基相結合。在595mm下測定的吸光度值A595,與蛋白質(zhì)濃度成正比。
方法特點:
優(yōu)點:靈敏度比Lowry高約4倍,高效率、檢測過程簡便、只需要一種試劑,抗干擾能力強。
缺點:測定誤差大,不適用于不同蛋白的檢測。
檢出限:其最-低蛋白質(zhì)檢測量可達1ug。
干擾物:干擾物質(zhì)少,但去污劑、TritonX-100、十二烷基硫酸鈉、0.1N的NaOH會干擾實驗測定。
蛋白質(zhì)含量測定方法選擇
蛋白質(zhì)含量測定時,考慮以下因素后選定適用的檢測方法。
①實驗對測定所要求的靈敏度和精確度;
②蛋白質(zhì)的性質(zhì);
③溶液中存在的干擾物質(zhì);
④測定所要花費的時間。
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