理想的 WB 實驗長啥樣?
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今天我們來盤點一下都有哪些WB好物值得囤貨吧,還有每個步驟的常見問題解析,助您WB更絲滑。
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問題1:使用RIPA裂解液時,為什么總蛋白產(chǎn)量偏低?
答:有些細胞難以裂解,可能導致蛋白產(chǎn)量較低。確保細胞沉淀充分懸浮于RIPA裂解液中,延長孵育時間并間或旋轉(zhuǎn)混合,可以提升蛋白產(chǎn)量。此外,可以通過超聲處理細胞沉淀來提高產(chǎn)量
答:建議在使用RIPA裂解液之前,向樣品中添加蛋白酶抑制劑混合物(如Pierce? 蛋白酶抑制劑片劑,貨號A32965),以避免蛋白酶對樣品中的蛋白降解。
問題1:哪些物質(zhì)會干擾BCA定量分析的結(jié)果?
答:部分干擾 BCA 定量分析的物質(zhì)包括還原性物質(zhì)、螯合劑以及強酸或強堿,即使?jié)舛群艿鸵部赡軙绊懚康慕Y(jié)果:
另外,一些物質(zhì)對 BCA 定量分析方法的干擾程度較低,當其在原始樣品中含量低于某特定濃度時,僅對結(jié)果造成微小影響(可耐受)。此外,多種干擾物質(zhì)可能產(chǎn)生加和作用,例如當樣品緩沖液中含有多種干擾物質(zhì)時,即使其中單一干擾物質(zhì)的濃度低于可兼容濃度,總體仍有可能對蛋白質(zhì)的定量分析產(chǎn)生干擾。
答:主要由樣品中的干擾物質(zhì)決定。如果你的蛋白抽提試劑中含有大量去垢劑且不含有螯合劑、還原劑時,可使用BCA法;如果你的蛋白里含有EDTA等金屬螯合劑或者含有還原型物質(zhì),且不含有去垢劑時,可使用Bradford法。
答:依據(jù)測試過的數(shù)據(jù),Thermo Scientific M-PER,RIPA總蛋白抽提試劑,Mem-PER Plus膜蛋白抽提試劑,NE-PER核蛋白抽提試劑,亞細胞組分分離試劑盒等均可直接使用BCA進行蛋白定量,T-PER抽提后的蛋白經(jīng)過稀釋可使用BCA進行定量。
答:不能,檢測多肽濃度需要用專門的多肽濃度檢測試劑盒,如Pierce? Quantitative Fluorometric Peptide Assay(貨號23290),或Pierce? Quantitative Colorimetric Peptide Assay(貨號23275)。
問題5:BCA法需要孵育至少30分鐘,有沒有更快的方法?
答:全新Pierce 免稀釋Rapid Gold快速 BCA試劑盒(貨號A55860-2400 T,A55861-1200 T、A55862-96 T),只需孵育5分鐘,室溫下即可進行。再加上免稀釋BSA標準品的便利性,最快15分鐘即可搞定蛋白定量。此外,Rapid Gold BCA試劑盒保留了經(jīng)典BCA法的高線性、高去垢劑兼容性和低蛋白差異性,使用更加快捷、簡便。
蛋白marker是日常實驗很常用的試劑,下面我們來一起看看使用過程中都有哪些常見問題吧。
問題1:為什么在不同凝膠體系中,蛋白分子量標準的遷移特性會有所不同?
當相同的蛋白質(zhì)在不同的SDS-PAGE緩沖系統(tǒng)(如 Bis-Tris 和 Tris-甘氨酸)中運行時,蛋白質(zhì)的遷移率會產(chǎn)生輕微差異。每種 SDS-PAGE 緩沖系統(tǒng)均具有不同的 pH 值,因而會影響蛋白質(zhì)的電荷及其與 SDS 的結(jié)合能力。蛋白質(zhì)遷移率的變化程度在天然蛋白質(zhì)中通常很小,但對于非典型或化學修飾的蛋白質(zhì),如預染蛋白Marker,其變化更為明顯。
問題2:為什么同一蛋白Marker在不同凝膠體系中的分子量會不一樣?如果我想知道精準蛋白分子量該怎么辦?
由于問題1中所述的蛋白遷移特性,所有預染蛋白Marker的表觀分子量都會因緩沖條件的不同而發(fā)生變化,所以應根據(jù)所用凝膠體系使用相匹配的表觀分子量,來更準確地定位您的目標蛋白。如需查看賽默飛蛋白Marker在各凝膠體系中的表觀分子量,請見產(chǎn)品說明書中的遷移模式示意圖(Migration Patterns)。
如果需要精準測定目標蛋白的分子量,推薦使用非預染蛋白Marker。兩大類蛋白Marker的推薦使用情形對比請見下表:
問題3:請問PageRuler預染蛋白marker使用時有什么注意事項嗎?
由于Marker中含有SDS,其在低溫下易析出,因此marker在上樣前,需要在室溫進行回溫(如20-25℃回溫5-10分鐘),并在上樣前要充分輕柔混勻;避免低溫操作,可有效減少異常條帶的出現(xiàn);
上樣時使用無蛋白酶的吸頭(如高壓滅菌過的吸頭)進行上樣,避免蛋白酶引起蛋白降解,從而導致不可逆的條帶彌散;
對于小膠(如8cm x 8cm),保證marker上樣量在1.0mm厚的膠中上樣至少5 μL,1.5mm厚的膠上樣至少10 μL;
切勿煮沸或高溫孵育。
問題1:膜可以用 GelCode Blue 考染試劑染色嗎?
可以。產(chǎn)品說明書中包含膜染色流程——用水清洗膜 1-2 分鐘,染色 2-5 分鐘,然后用 50% 甲醇、1% 乙酸脫色。為了獲得最佳膜染色效果,建議使用 MemCode 可逆性膜蛋白染色劑(貨號 24580、24585)。
問題2:在使用 GelCode Blue 考染試劑染色之前,是否有任何類型的凝膠需要固定?
是的。對于使用 MOPS 或 MES 電泳緩沖液進行電泳的凝膠,用 50% 甲醇和 7% 乙酸固定凝膠 15 分鐘,然后用水徹底清洗。
問題3:我第一次使用新打開的一瓶 GelCode Blue考染試劑時,效果很好,但現(xiàn)在不好用了。出了什么問題?
加之前必須將瓶內(nèi)物質(zhì)充分混合,以確保溶液均勻。
問題4:我正在使用 GelCode Blue 考染試劑。我可以不進行水洗增強步驟,而是像處理其他考馬斯亮藍染色劑一樣用水/甲醇/乙酸脫色嗎?
是的,通常用于考馬斯亮藍染色凝膠的操作都可以在 GelCode Blue 試劑染色凝膠上成功進行。
問題5:GelCode Blue 考染試劑可以用于等電聚焦 (IEF) 凝膠嗎?
可以。IEF 凝膠可以染色,但必須先在 20% TCA 中固定 30 分鐘,然后用水清洗 30 分鐘;然后才能照常染色凝膠。
- 染色凝膠顯影過度。減少顯影時間。
- 遺漏了清洗步驟或使用的水質(zhì)量差。不要跳過或減少清洗步驟并使用超純水。
- 所用的容器或耗材有污染。使用用超純水沖洗的干凈容器或耗材。
- 凝膠制備中使用了不純化學品或預制凝膠已過期。請使用分析級化學品或使用未過期的預制凝膠。
- 終止溶液無法有效停止凝膠顯影。準備新的 5% 乙酸,并在與凝膠孵育的前幾分鐘內(nèi)更換兩次。
問題2:可以使用 Thermo Scientific 銀染試劑盒檢測核酸嗎?
可以。文獻和分子生物學方案中的參考資料表明,可以使用此類銀染劑在聚丙烯酰胺凝膠中檢測核酸。
問題3:Thermo Scientific 銀染試劑盒方案中的固定和染色時間有多重要?
該方案在固定和染色時間方面非常靈活。凝膠固定至少 30 分鐘后,可以將其儲存在水中直到第二天。凝膠染色時間范圍為 5 分鐘至 24 小時,不會產(chǎn)生額外的背景。
問題4:Thermo Scientific 銀染試劑盒方案中其他步驟的孵育時間有多重要?
1 分鐘敏化和 2 x 1 分鐘水洗步驟對于獲得最佳染色效果至關重要。顯色時間(2-3 分鐘)也很重要,一旦發(fā)生所需的顯色,就必須立即添加終止液。
【步驟4轉(zhuǎn)印】快轉(zhuǎn)系統(tǒng)常見問題解析
問題1:Power Blotter 快速蛋白轉(zhuǎn)印系統(tǒng),可以轉(zhuǎn)印大蛋白么?
回答:曾經(jīng)嘗試成功轉(zhuǎn)印過200kD左右的大蛋白。我們還發(fā)現(xiàn)使用phos-tag蛋白膠進行植物、農(nóng)作物磷酸化蛋白研究時,Power Blotter可在10分鐘左右快速完成轉(zhuǎn)印,大大縮短濕轉(zhuǎn)所需的轉(zhuǎn)印時間,加速實驗進程。
問題2:Power Blotter 快速轉(zhuǎn)移系統(tǒng),必須要用thermo的配套耗材么?
回答:Power Blotter 為開放系統(tǒng),只需搭配一瓶快轉(zhuǎn)液,每塊膠的成本低至8塊錢。還遇到過實驗室節(jié)約小能手,可把每塊膠成本降低到4塊錢。
答:沒有一種底物能完全滿足所有WB需求。大家不妨在實驗室中常備SuperSignal West Pico PLUS底物進行日常檢測。它具有高飛克級靈敏度和較長信號持續(xù)時間,不僅滿足大部分常規(guī)實驗的需求,可多次成像,也是新靶點檢測的理想之選。同時,建議一起購置超敏底物,如SuperSignal West Atto底物,靈敏度能夠達到阿克級,超微量靶點也不在話下。如果超敏底物也檢測不出,可進一步排查抗體或樣本的問題。
圖1. SuperSignal? West Pico PLUS的信號穩(wěn)定持久。使用2倍梯度稀釋的HEK 293或HeLa細胞裂解物進行靶點的檢測 (起始量分別為4 μg /孔或20 μg /孔)。
問題2:靶蛋白豐度低,WB條帶淡,增加抗體濃度就能檢測到?
答:二抗?jié)舛炔灰?,否則容易導致信號丟失。這是因為局部高濃度HRP在催化底物的同時也會產(chǎn)生大量的自由基,自由基可以導致HRP被氧化并被失活,進而導致信號輸出的衰減。同理,若信號迅速衰減,也可以嘗試減少二抗的用量。
圖2. 信號發(fā)射曲線示例。當WB體系中存在過量酶時,會在加入底物后迅速達到信號峰值,并迅速耗盡底物(信號1). 在理想的體系中,信號強度會在加入底物約5分鐘后達到峰值,并維持若干小時的平臺期(信號2)。
問題3:我的底物太靈敏了,先稀釋下再顯影結(jié)果會更好么?
答:千萬不要稀釋底物。首先,這會造成檢測體系的不穩(wěn)定。其次,底物的稀釋比例與信號強度之間沒有絕對相關性。比如,底物稀釋為原濃度的1/2,而信號并不是減少一半,極易導致實驗結(jié)果難以重復。
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