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問答社區(qū)

在基因進(jìn)行pcr擴(kuò)增過程中涉及到哪些要素?其中哪些因素決定了其效率

sockusuallyn 2014-12-21 01:53:14 718  瀏覽
  •  

參與評(píng)論

全部評(píng)論(1條)

  • 憶飽商 2014-12-22 00:00:00
    無先后順序,關(guān)于要素能想到的是:1,引物設(shè)計(jì)合理。包括退火溫度合適也就是GC含量不要太高;特異性強(qiáng)也就是只結(jié)合目的基因;自身不形成引物二聚體;2,模板質(zhì)量要高,主要純度要高不含雜質(zhì)或很少。3,合適的反應(yīng)體系,就是聚合酶、模板、引物、buffer、dNTP、水、Mg2+離子等的配比合適,體系總量合適。4,退火溫度,影響著產(chǎn)物純度,也就是影響反應(yīng)的特異性及反應(yīng)效率。5,配制反應(yīng)體系還有上樣時(shí)注意不要互相污染,直接影響擴(kuò)增結(jié)果。6,配制體系時(shí)Z好先加入ddH2O,Z好Z后加入酶或模板,防止提前反應(yīng)。 決定效率的因素:1,模板純度和模板量(純度越GX率越大,一定范圍內(nèi)模板量越GX率越高,但是模板或是引物量太大了可能會(huì)出現(xiàn)非特異性擴(kuò)增);2,引物的特異性(直接決定擴(kuò)增的特異性);3,Mg2+離子濃度(影響聚合酶的活性,太低反應(yīng)慢,太高會(huì)有非特異性擴(kuò)增);4,buffer(緩沖體系要合適,否則影響擴(kuò)增效率甚至擴(kuò)不出來)5,退火溫度(非常重要的因素,影響反應(yīng)效率及特異性,退火溫度過高可能無擴(kuò)增產(chǎn)物,退火溫度過低會(huì)出現(xiàn)非特異性擴(kuò)增)6,酶(用量太大會(huì)有非特異擴(kuò)增)7,反應(yīng)循環(huán)數(shù)(循環(huán)數(shù)過少產(chǎn)物太低,循環(huán)數(shù)過高會(huì)出現(xiàn)非特異性擴(kuò)增) 能想到的差不多就這些。

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    評(píng)論

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PCR擴(kuò)增效率的評(píng)估

做過PCR的小伙伴都知道,PCR前期的驗(yàn)證引物探針性能和確定最適反應(yīng)條件是確保正式實(shí)驗(yàn)順利進(jìn)行的前提。PCR實(shí)驗(yàn)中有個(gè)相當(dāng)重要的工作——即是PCR擴(kuò)增效率的評(píng)估。擴(kuò)增效率是PCR檢測(cè)性能最重要的指標(biāo)之一,也是定量分析計(jì)算結(jié)果時(shí)所需要的參數(shù)。接下來,讓小編給大家細(xì)細(xì)說來吧。

什么是擴(kuò)增效率

PCR是一種DNA體外擴(kuò)增技術(shù),通常包括了30 - 50個(gè)循環(huán)周期。每個(gè)循環(huán)中,目標(biāo)DNA分子的拷貝數(shù)最多會(huì)增加1倍。但在實(shí)際反應(yīng)中,1個(gè)DNA分子在1個(gè)擴(kuò)增循環(huán)后被成功復(fù)制的概率,也就是擴(kuò)增效率E<1。而PCR的特點(diǎn)是反應(yīng)初期目標(biāo)DNA分子呈現(xiàn)指數(shù)增長,這個(gè)階段的擴(kuò)增效率可以無限接近于1;隨后由于反應(yīng)組分消耗或聚合酶活性下降或兩者共同作用,導(dǎo)致反應(yīng)效率逐漸下降并ZZ停止。不管是定量DNA分子初始量,還是計(jì)算表達(dá)量差異,都需要精確評(píng)估PCR擴(kuò)增效率。

如何評(píng)估擴(kuò)增效率

標(biāo)準(zhǔn)曲線是評(píng)估PCR擴(kuò)增效率最可靠和穩(wěn)定的一種方法,被研究者們廣泛認(rèn)可。該方法涉及到制作一系列的樣品來控制目標(biāo)模板的相對(duì)數(shù)量。這些樣品通常由濃縮的原液連續(xù)稀釋而成,最常用的是10倍稀釋。使用一系列稀釋樣品,采用標(biāo)準(zhǔn)qPCR程序進(jìn)行擴(kuò)增獲得Cq值,ZH根據(jù)各樣品濃度及相應(yīng)的Cq值繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得到線性方程Cq= -klgX0+b,擴(kuò)增效率E=10(-1/k)-1。利用qPCR進(jìn)行定量分析時(shí),要求擴(kuò)增效率范圍在90%-110%(3.6>k>3.1)。



影響擴(kuò)增效率的關(guān)鍵因素

PCR的效率取決于許多因素,包括以下方面:

1)檢測(cè)的性能。這取決于引物、模板的序列和結(jié)構(gòu)。二級(jí)結(jié)構(gòu)和分子間的相互作用都會(huì)降低PCR效率。

2)樣品基質(zhì)。其中可能含有來自樣品的YZ劑和其他干擾物質(zhì),或攜帶來自上游加工步驟的試劑。檢測(cè)樣品是否有YZ作用,可使用RNA或DNA Spikes方法進(jìn)行檢測(cè),或者通過倍比稀釋得到標(biāo)準(zhǔn)曲線也可以觀察到。

3)所用試劑及其濃度。本質(zhì)上,任何PCR試劑都會(huì)一定程度上限制PCR反應(yīng)速率和性能。

4)競(jìng)爭性反應(yīng)。多重反應(yīng)時(shí),各基因的擴(kuò)增存在反應(yīng)成分的競(jìng)爭。

5)qPCR儀器。由于儀器特定的硬件/軟件屬性和設(shè)置、以及用于提取Cq值的特定算法不同,相同的實(shí)驗(yàn)中,不同的儀器會(huì)產(chǎn)生不同的PCR效率。

6)技術(shù)重復(fù)。一般進(jìn)行3次以上的技術(shù)重復(fù)以校正實(shí)驗(yàn)誤差,重復(fù)數(shù)越多精確度越高。

7)連續(xù)稀釋中的移液體積。移液體積越大,移液器誤差或操作誤差引起的影響越小。

qPCR擴(kuò)增效率的判斷

qPCR擴(kuò)增效率主要是通過標(biāo)準(zhǔn)曲線的線性關(guān)系方程Cq=-klgX0+b來判斷,擴(kuò)增效率E在90%-110%之間時(shí),認(rèn)為擴(kuò)增接近理想情況;參數(shù)R2要求≥0.98,R2越接近1,則說明Cq和X0的Log值之間的相關(guān)性越高。

那么擴(kuò)增效率E表現(xiàn)不好,主要分為兩種情況:

1)過低的擴(kuò)增效率(<90%)

可能存在的原因:

? 移液器校準(zhǔn)不良或移液技術(shù)差。

? 不正確的稀釋導(dǎo)致標(biāo)準(zhǔn)曲線出現(xiàn)錯(cuò)誤。

? 染料濃度低熒光或者儀器未校準(zhǔn)染料。

? 引物設(shè)計(jì)不好或擴(kuò)增子具有二級(jí)結(jié)構(gòu)。

? 標(biāo)準(zhǔn)曲線動(dòng)態(tài)范圍太小。

? Taq酶無活性或活性降低。

? 樣品YZ。

2)過高的擴(kuò)增效率(> 110%)

可能存在的原因:

? 移液器校準(zhǔn)不良或移液技術(shù)差。

? 不正確的稀釋導(dǎo)致標(biāo)準(zhǔn)曲線出現(xiàn)錯(cuò)誤。

? 引物二聚體或非特異性擴(kuò)增。

? 標(biāo)準(zhǔn)曲線動(dòng)態(tài)范圍太小。

? 基因組DNA污染(僅限RNA模板未進(jìn)行DNase I處理或DNase I消化不完全)。


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