概述
RNA分子的亞細胞定位和動態(tài)變化與多種生命活動密切相關(guān)。然而,在活細胞中同時追蹤多個RNA分子仍面臨技術(shù)挑戰(zhàn)。近日,加州大學爾灣分校的 Jennifer A. Prescher 和 Andrej Lupták 教授團隊在《美國化學會志》(JACS)發(fā)表研究,報道了一套基于生物發(fā)光的“RNA燈籠”系統(tǒng)。該系統(tǒng)利用正交的RNA結(jié)合蛋白和分裂螢光素酶技術(shù),實現(xiàn)了多靶點 RNA 的高分辨率成像,為RNA生物學研究提供了新的工具。
一、研究背景
傳統(tǒng)RNA成像的主流技術(shù)熒光成像,因依賴外部激發(fā)光,易造成細胞光毒性、熒光分子光漂白,且所需大尺寸適配子標簽會干擾RNA正常功能;而原位雜交技術(shù)僅能檢測固定細胞,只能獲取RNA分布靜態(tài)信息,無法捕捉其動態(tài)變化過程。
生物發(fā)光成像通過熒光素酶催化熒光素的氧化反應(yīng)產(chǎn)生光,無需任何外部激發(fā)光,從根源上避免了光毒性和光漂白;同時,生物發(fā)光的背景噪聲極低,幾乎沒有細胞自發(fā)發(fā)光的干擾,信噪比遠高于熒光成像。它兼顧了活細胞連續(xù)成像、多靶點同時檢測和無干擾低背景的要求。
該研究將此前開發(fā)出來的第一代 RNA lanterns 生物發(fā)光探針升級為多靶點、多色的正交化、模塊化生物發(fā)光成像平臺,實現(xiàn)了活細胞中多個 RNA 靶點的特異性檢測和同時動態(tài)分析。
二、核心設(shè)計:三組正交化探針構(gòu)建多色生物發(fā)光成像系統(tǒng)
研究人員基于分裂型NanoLuc螢光素酶(NanoBiT)構(gòu)建了“RNA燈籠”系統(tǒng)。該系統(tǒng)將螢光素酶分為兩個無活性的片段:LgBiT和SmBiT。只有當兩個片段在空間上靠近時,才能重新組裝為有活性的全酶并產(chǎn)生生物發(fā)光。
為實現(xiàn)RNA特異性成像,研究團隊將SmBiT與MS2外殼蛋白(MCP)融合,將LgBiT與其他RNA結(jié)合蛋白融合。同時,在目標RNA上引入結(jié)構(gòu)化的RNA標簽,該標簽包含MS2適配體和另一個正交適配體。當目標RNA表達時,兩個融合蛋白分別結(jié)合至RNA標簽的對應(yīng)位置,使LgBiT和SmBiT相互靠近,產(chǎn)生生物發(fā)光信號。
圖表 1. 用于多重RNA檢測的生物發(fā)光平臺。(A)用于多轉(zhuǎn)錄本成像的RNA燈籠策略示意圖。MS2外殼蛋白(MCP)和一個正交RNA結(jié)合蛋白(RBP)分別與NanoBiT片段(SmBiT和LgBiT)連接。通過將熒光蛋白(FP)與LgBiT融合,實現(xiàn)了多色發(fā)射。RNA燈籠使用PP7外殼蛋白(PCP)、噬菌體HK022 Nun蛋白(Nun)以及古菌核糖體蛋白L7Ae(L7Ae)進行設(shè)計。當燈籠與含有MS2及PP7、boxB或k-turn基序的剛性化RNA標簽結(jié)合時,發(fā)生NanoBiT互補。(B)MCP-Nun RNA燈籠(左)和MCP-L7Ae RNA燈籠(右)的結(jié)構(gòu)模型。使用PyMOL對結(jié)構(gòu)進行排列,包括MCP(紫色,PDB ID: 1ZDI)、Nun或L7Ae(黃色,分別為PDB ID: 1HJI和1RLG)、NanoLuc(PDB ID: 5IBO)(其中LgBiT以青色表示,SmBiT以深藍色表示)以及一個熒光蛋白(灰色,PDB ID: 5LK4)。
為實現(xiàn)多重成像,研究團隊選擇了三對正交的RNA結(jié)合蛋白-適配體組合:MS2-PP7(結(jié)合PCP蛋白)、MS2-boxB(結(jié)合Nun蛋白)以及MS2-k-turn(結(jié)合L7Ae蛋白)。這些組合之間不存在交叉反應(yīng),可同時檢測多個不同的RNA目標。
此外,研究人員通過生物發(fā)光共振能量轉(zhuǎn)移技術(shù)實現(xiàn)了多色成像。在LgBiT與RNA結(jié)合蛋白之間插入熒光蛋白(如VenusΔC12或mScarlet-I),可將NanoLuc的藍光轉(zhuǎn)換為黃色或紅色發(fā)光,從而通過顏色區(qū)分不同的RNA目標。
圖表 2. 正交RNA燈籠的初步評估。(A)一組三色正交RNA燈籠的示意圖。一個NanoBiT MCP-PCP燈籠結(jié)合MS2-PP7,一個VenusΔC12融合的MCP-Nun燈籠結(jié)合MS2-boxB,一個mScarlet-I融合的MCP-L7Ae燈籠結(jié)合MS2-k-turn。(B)MCP-Nun和MCP-L7Ae RNA燈籠與先前驗證過的MCP-PCP燈籠相比的初步測試。每種探針在HEK293T細胞裂解液中表達,并外源加入不同濃度(0.1?10 nM)的包含其對應(yīng)適配體(MS2與PP7、boxB或CS2)的剛性化RNA標簽。圖中繪制了相對于無RNA對照的總發(fā)光強度倍比變化。誤差線表示n=3次重復(fù)實驗的標準誤。(C)歸一化的RNA燈籠發(fā)射光譜。在表達每種燈籠的HEK293T細胞裂解液混合物中,加入正交RNA標簽(MS2-PP7和MS2-boxB標簽為1 nM,MS2-CS2標簽為100 pM)后,檢測到不同的發(fā)射光譜。歸一化光譜代表n=6次重復(fù)實驗的平均值。振幅變異小于線寬。
三、RNA 標簽的結(jié)構(gòu)優(yōu)化
在初步評估中,新構(gòu)建的MCP-Nun和MCP-L7Ae系統(tǒng)信號強度低于原有的MCP-PCP系統(tǒng)。研究人員推測,這可能與熒光蛋白的引入增加了系統(tǒng)體積有關(guān),需要調(diào)整RNA標簽的結(jié)構(gòu)以優(yōu)化LgBiT和SmBiT的空間排列。
研究團隊合成了一系列RNA標簽變體,系統(tǒng)性地改變MS2適配體與第二個適配體之間的間隔長度和相位角度。實驗結(jié)果顯示,對于MCP-Nun系統(tǒng),當間隔為29個核苷酸(M-29-B)時,體外信號增強倍數(shù)達到約220倍。對于MCP-L7Ae系統(tǒng),間隔為35個核苷酸(M-35-C)時取得最佳信號,增強倍數(shù)超過100倍。
值得注意的是,較長間隔的RNA標簽在活細胞中表現(xiàn)不佳,可能與其穩(wěn)定性降低或降解速率增加有關(guān)。因此,研究人員選擇了較短的M-7-B和M-7-C標簽進行后續(xù)的細胞實驗。這些優(yōu)化后的RNA標簽保持了良好的正交性,僅與對應(yīng)的結(jié)合蛋白產(chǎn)生信號,與其他系統(tǒng)無交叉反應(yīng)。
圖表 3. RNA標簽優(yōu)化。(A)MCP-Nun和(B)MCP-L7Ae RNA燈籠在HEK293T細胞裂解液中表達時,在一系列結(jié)構(gòu)設(shè)計下的相對生物發(fā)光(A圖為1 nM,B圖為100 pM)。不同間隔長度(各柱下方以藍色突出顯示)調(diào)節(jié)了適配體之間的距離和相位角。相對發(fā)光強度表示占最大信號的百分比,其中最高平均值設(shè)為100%。(C)在不同濃度RNA標簽(0?100 nM)下,RNA燈籠的正交性。燈籠在HEK293T細胞裂解液中表達,向每種燈籠外源加入RNA標簽(M-7-P/B/C)。相對發(fā)光強度表示每種探針產(chǎn)生信號占最大信號的百分比,各彩色柱代表加入不同的正交RNA標簽。誤差線表示標準誤,(A、B)圖為n=9個樣本(來自三個生物學重復(fù)實驗,每個實驗包含三個技術(shù)重復(fù)),(C)圖為n=3個樣本。
四、活細胞驗證:實現(xiàn)亞細胞分辨率的多靶點 RNA 成像
研究團隊通過兩步實驗,在活細胞中驗證了該系統(tǒng)的多重 RNA 成像能力,實現(xiàn)了單細胞水平、亞細胞分辨率的多靶點 RNA 檢測。
1. 模型轉(zhuǎn)錄本檢測:實現(xiàn)活細胞的多色特異性成像
研究人員首先在HEK293T細胞中驗證了系統(tǒng)的可行性。他們將帶有M-7-B或M-3-P標簽的TagRFP657 mRNA轉(zhuǎn)染至穩(wěn)定表達對應(yīng)RNA燈籠的細胞系中。
實驗結(jié)果顯示,M-7-B標簽的表達使MCP-Nun燈籠產(chǎn)生黃色生物發(fā)光信號,而M-3-P標簽的表達使MCP-PCP燈籠產(chǎn)生紅色生物發(fā)光信號。當兩種標簽同時存在時,可分別檢測到兩種顏色的信號,未觀察到交叉干擾。RFP熒光信號作為RNA表達的獨立驗證,與生物發(fā)光信號存在一定相關(guān)性,但單細胞水平上存在差異,可能與轉(zhuǎn)染效率和RNA濃度的“鉤狀效應(yīng)”有關(guān)。
圖表 4. 活細胞中模型轉(zhuǎn)錄本的多重生物發(fā)光成像。(A)編碼熒光蛋白并在3′非翻譯區(qū)包含結(jié)構(gòu)化RNA標簽的mRNA示意圖。TagRFP657(RFP)序列在3′區(qū)域引入M-7-B或M-3-P編碼。RFP-M-7-B的轉(zhuǎn)錄導(dǎo)致MCP-Nun燈籠組裝(黃色),RFP-M-3-P的轉(zhuǎn)錄導(dǎo)致MCP-PCP燈籠組裝(暗紅色)。(B)穩(wěn)定表達各燈籠的HEK293T細胞共培養(yǎng)成像。細胞未轉(zhuǎn)染(? RNA),或瞬時轉(zhuǎn)染編碼RFP-M-7-B、RFP-M-3-P或兩者(+ 所示標簽)的DNA。RFP熒光(紅色,左列)驗證了mRNA的表達。MCP-Nun和MCP-PCP探針熒光(分別為黃色和品紅色通道)指示RNA燈籠的表達。在相應(yīng)RNA標簽存在下,燈籠互補產(chǎn)生發(fā)光信號(灰色)。在M-7-B存在下,100%的發(fā)光細胞表現(xiàn)出靶向信號(MCP-Nun,15/15)。在M-3-P靶向RNA結(jié)構(gòu)存在下,81%(22/27)的發(fā)光細胞表現(xiàn)出靶向信號(MCP-PCP)。兩種RNA同時加入時,表達任一RNA燈籠的細胞均產(chǎn)生信號(12/30發(fā)光細胞表達MCP-Nun燈籠,18/30表達MCP-PCP燈籠)。比例尺 = 20 μm。
2. 天然 RNA 檢測:精準區(qū)分不同亞細胞定位的 RNA
為驗證系統(tǒng)對生理相關(guān) RNA 的成像能力,研究人員選擇兩個具有典型亞細胞定位特征的RNA目標:NEAT1長鏈非編碼RNA(定位于細胞核)和β-肌動蛋白mRNA(定位于細胞質(zhì))。將M-7-B標簽插入NEAT1的3’區(qū)域,M-3-P標簽插入β-肌動蛋白mRNA的3’區(qū)域。
研究采用生物發(fā)光相位子分析技術(shù)進行成像,該方法通過正弦和余弦濾光片同時采集不同波長的信號,避免濾光片切換帶來的時間延遲和信號衰減。成像結(jié)果顯示,NEAT1-M-7-B的信號定位于細胞核區(qū)域,與MCP-Nun燈籠的黃色信號對應(yīng);而β-肌動蛋白-M-3-P的信號分布于細胞質(zhì)區(qū)域,與MCP-PCP燈籠的藍色信號對應(yīng)。兩種信號在單細胞水平上可同時分辨,驗證了系統(tǒng)在復(fù)雜生物樣本中的多重成像能力。
此外,研究團隊檢測了 RNA 標簽對靶標 RNA 生理功能的影響,發(fā)現(xiàn)帶標簽的 RNA 與未帶標簽的 RNA 在降解速率上無顯著差異,且 RNA lanterns 探針與標簽的復(fù)合物可在細胞中穩(wěn)定存在約 1 小時,證實該系統(tǒng)對 RNA 的正常生理功能幾乎無干擾,可捕捉到細胞內(nèi)真實的 RNA 動態(tài)變化。
圖表 5. 活細胞中生物學多樣性轉(zhuǎn)錄本的多重成像。(A)兩種標記的目標轉(zhuǎn)錄本(mCherry-β-肌動蛋白3′非翻譯區(qū)雜合mRNA和NEAT1非蛋白編碼RNA)的示意圖。編碼任一轉(zhuǎn)錄本的DNA均經(jīng)過改造,在3′區(qū)域引入結(jié)構(gòu)化RNA標簽。預(yù)計mRNA定位于細胞質(zhì),而非蛋白編碼RNA定位于細胞核。(B)同時表達兩種RNA燈籠和目標轉(zhuǎn)錄本的細胞代表性圖像。穩(wěn)定表達MCP-Nun燈籠的HEK293T細胞瞬時轉(zhuǎn)染表達MCP-PCP燈籠的DNA以及標記的RNA。NEAT1-M-7-B引導(dǎo)MCP-Nun燈籠在細胞核內(nèi)發(fā)生互補(綠色),而mCherry-β-肌動蛋白3′非翻譯區(qū)-M-3-P引導(dǎo)MCP-PCP燈籠在細胞質(zhì)中發(fā)生互補(藍色)。明場圖像和Hoechst核染色作為亞細胞定位的參照。相位子彩色圖像是由發(fā)光強度(以任意單位計)與通過生物發(fā)光相位子分析獲得的MCP-Nun(綠色)和MCP-PCP(藍色)探針掩膜疊加合成的。相位子彩色圖像證實了NEAT1-M-7-B的核定位和mCherry-β-肌動蛋白3′非翻譯區(qū)-M-3-P的胞質(zhì)定位。細胞3和細胞4展示了同一細胞內(nèi)的多重RNA成像。比例尺 = 20 μm。
五、技術(shù)特點與應(yīng)用前景
本研究報道的 RNA 燈籠系統(tǒng)具有以下特點:第一,采用生物發(fā)光原理,無需外部光源激發(fā),避免了光毒性和光漂白問題;第二,通過正交RNA結(jié)合蛋白和BRET技術(shù)實現(xiàn)多重成像,可同時追蹤多種RNA分子;第三,RNA標簽長度較短(65-83個核苷酸),對目標RNA的潛在干擾較?。坏谒?,系統(tǒng)具有模塊化特征,可擴展至更多正交蛋白-適配體組合。
該系統(tǒng)的局限性包括:RNA標簽可能對目標RNA的穩(wěn)定性產(chǎn)生一定影響;信號強度與RNA表達水平之間的關(guān)系受多種因素調(diào)控,需要優(yōu)化各組分表達水平;應(yīng)用于內(nèi)源性RNA成像時需要進行基因組編輯,引入標簽序列。
總體而言,這套生物發(fā)光RNA成像系統(tǒng)為研究活細胞中RNA的定位、運輸和相互作用提供了新的技術(shù)手段。隨著進一步優(yōu)化,該系統(tǒng)有望在發(fā)育生物學、神經(jīng)科學和疾病研究等領(lǐng)域發(fā)揮作用。
原文鏈接:https://doi.org/10.1021/jacs.5c16597
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