異形胞(heterocyst)某些絲狀藍(lán)藻(如束毛藻、魚(yú)腥藻、念珠藻等)所特有的變態(tài)營(yíng)養(yǎng)細(xì)胞,是由普通營(yíng)養(yǎng)細(xì)胞在一定的條件下尤其是氮素營(yíng)養(yǎng)缺乏時(shí)分化而成。異形胞一般與營(yíng)養(yǎng)細(xì)胞同形,單個(gè)地間生,一條藻絲上往往有數(shù)個(gè)異形細(xì)胞。異形胞與營(yíng)養(yǎng)細(xì)胞的主要形態(tài)區(qū)別是:個(gè)體大,細(xì)胞壁厚,細(xì)胞質(zhì)中的顆粒物質(zhì)溶解成顆粒狀態(tài),顏色呈淡黃綠色或呈透明狀。

而為關(guān)鍵的生理功能區(qū)別有兩點(diǎn):
l 異形胞能進(jìn)行固氮作用,在其高含量固氮酶的催化下,將空氣中的N2轉(zhuǎn)變?yōu)?/span>NH3,NH4+,進(jìn)而形成氨基酸。
l 異形胞藻膽素含量顯著低于營(yíng)養(yǎng)細(xì)胞。
正是基于這兩點(diǎn),則引出了科學(xué)家的兩點(diǎn)疑惑:
l 早期研究證實(shí),藍(lán)藻在固氮過(guò)程中也是存在光合放氧的,但固氮酶會(huì)被氧氣不可逆地YZ。藍(lán)藻如何保護(hù)固氮酶不被光合作用放出的氧氣破壞?
l 如何直接觀測(cè)異形胞與營(yíng)養(yǎng)細(xì)胞光合特性的差異?
從21世紀(jì)之初,隨著FKM多光譜熒光動(dòng)態(tài)顯微成像技術(shù)的提出和逐漸完善,科學(xué)家對(duì)藍(lán)藻異形胞光合特性的研究達(dá)到前人所不能企及的高度,甚取得了突破性的進(jìn)展。本文通過(guò)相關(guān)文獻(xiàn)案例展示這一研究發(fā)展的過(guò)程:

FKM多光譜熒光動(dòng)態(tài)顯微成像系統(tǒng)
1. 開(kāi)端:證實(shí)固氮和光合作用的時(shí)空隔離
FKM多光譜熒光動(dòng)態(tài)顯微成像技術(shù)于2000年正式提出并實(shí)用化,美國(guó)羅格斯大學(xué)Berman-Frank與德國(guó)康斯坦茨大學(xué)、捷克微生物研究所合作利用FKM技術(shù)對(duì)束毛藻Trichodesmium strain IMS101絲狀藻的光合特性進(jìn)行研究,對(duì)比固氮酶的活性與分布,發(fā)現(xiàn)固氮和光合作用從時(shí)間和空間兩方面被隔離開(kāi)了。他們推測(cè)在光合放氧進(jìn)化的早期階段,固氮酶是厭氧異養(yǎng)機(jī)制的一個(gè)電子受體,而光系統(tǒng)I(PSI)為固氮提供了厭氧的微環(huán)境。這一研究成果發(fā)表于2001年《Science》。

A.阿拉弗拉海的Trichodesmium spp. B.使用熒光顯微鏡和熒光二級(jí)抗體Alexa-350(分子探針)觀察到的固氮酶在藻絲上的分布 C.用一級(jí)抗體標(biāo)記固氮酶并通過(guò)共聚焦激光顯微鏡獲取的圖像 D.采集自阿拉弗拉海的T. erythraeum,褐色斑點(diǎn)表示固氮旺盛的13:30-14:30細(xì)胞內(nèi)產(chǎn)生的H2O2的分布 E到H. Trichodesmium IMS101的葉綠素?zé)晒鈩?dòng)力學(xué)顯微成像 E和G. 光周期早期(00:00-04:00)的藻絲,此時(shí)的固氮作用很弱 F和H. 高固氮作用時(shí)的藻絲(進(jìn)入光周期后5-7小時(shí))E和F. 相對(duì)葉綠素?zé)晒猱a(chǎn)額成像圖,圖中可見(jiàn)在對(duì)應(yīng)時(shí)間里正常和明亮的藻絲(比如具有高熒光產(chǎn)額但Fv/Fm很低的藻絲)G和H. PSII效率Fv/Fm在藻絲上的假彩色二維分布圖
之后,他們又合作進(jìn)行更加深入的研究。通過(guò)FKM技術(shù)獲得的葉綠素?zé)晒獬上駡D與熒光淬滅動(dòng)力學(xué)曲線(xiàn)數(shù)據(jù),再次表明束毛藻光合作用與固氮的協(xié)同作用涉及光合活性狀態(tài)可逆變化的復(fù)雜時(shí)空格局。 這些活性狀態(tài)提供了通過(guò)PSII的電子傳輸進(jìn)行固氮所需的協(xié)調(diào)和微調(diào),并將光合放氧對(duì)固氮酶的YZ作用降ZD。這一研究發(fā)表于2004年《Plant Physiology》。
在這一研究結(jié)果通過(guò)葉綠素?zé)晒鈪?shù)小熒光F0、可變熒光Fv等,已經(jīng)表明進(jìn)行固氮的藍(lán)藻細(xì)胞其PSII活性已經(jīng)極低,進(jìn)而喪失光合放氧能力。研究者也推測(cè)固氮與光合的時(shí)空分隔可能與異形胞有關(guān)。但此時(shí)的FKM技術(shù)尚不完善,獲得的顯微熒光成像圖不能明確區(qū)分絲狀體上的單個(gè)細(xì)胞,因此也沒(méi)能獲得進(jìn)一步的支持證據(jù)。

FKM技術(shù)獲得的藍(lán)藻Trichodesmium絲狀體細(xì)胞葉綠素?zé)晒獬上駡D與熒光淬滅動(dòng)力學(xué)曲線(xiàn)數(shù)據(jù)
2. 進(jìn)展:證實(shí)異形胞PSII功能特性
2007年,FKM技術(shù)迎來(lái)了一次全面升級(jí)。這次升級(jí)之后,FKM從原來(lái)主要測(cè)量微藻細(xì)胞,擴(kuò)展到能夠測(cè)量植物葉片細(xì)胞,同時(shí)顯微放大倍數(shù)與成像分辨率進(jìn)一步提升,能夠清晰分辨單個(gè)細(xì)胞乃單個(gè)葉綠體。
于是,捷克科學(xué)院和南波西米亞大學(xué)、德國(guó)康斯坦茨大學(xué)再次合作,使用升級(jí)后的FKM系統(tǒng)對(duì)魚(yú)腥藻Anabaena sp. strain PCC 7120異形胞進(jìn)行更深入研究。研究人員明確觀測(cè)到隨著氮素缺乏脅迫程度的加重,絲狀體細(xì)胞開(kāi)始分化,營(yíng)養(yǎng)細(xì)胞和異形胞的葉綠素參數(shù)F0、Fm、Fv等都逐漸下降,表明光合色素的下降。但這一過(guò)程中,營(yíng)養(yǎng)細(xì)胞的ZD光化學(xué)效率Fv/Fm和持續(xù)電子流(量子產(chǎn)額)ΦPSII基本穩(wěn)定,表明其維持了PSII活性,但形成中的異形胞這兩項(xiàng)參數(shù)則顯著下降。更出人意料地,成熟的異形胞PSII天線(xiàn)色素含量顯著降低(F0顯著降低),但其PSII本身卻是完整的(Fv/Fm恢復(fù))。此,科學(xué)家終于直接觀測(cè)到異形胞PSII的分化過(guò)程與功能變化。

左圖:缺氮脅迫中營(yíng)養(yǎng)細(xì)胞與異形胞的熒光參數(shù)變化;右圖:絲狀體逐個(gè)細(xì)胞的顯微熒光成像分析,其中7號(hào)和17號(hào)細(xì)胞為成熟的異形胞,箭頭所指為其對(duì)應(yīng)的熒光參數(shù)
3. 突破:異形胞也能夠維持藻膽素含量
之前的研究表明,為了維持固氮這一高耗能過(guò)程,藍(lán)藻異形胞主要通過(guò)光系統(tǒng)I(PSI)合成ATP為其功能。藻膽素雖然是藻類(lèi)光合重要的光合色素之一,但由于其主要作為PSII的天線(xiàn)色素,而PSII光合過(guò)程中通過(guò)放氧復(fù)合體釋放的氧氣會(huì)使固氮酶失活。因此異形胞雖然具備完整的PSII,但其藻膽素含量顯著下降,從而吸收的光能很少進(jìn)入PSII,使其失去光合放氧的能力,從而維持固氮酶活性。但這種機(jī)制的缺點(diǎn)是用于固氮的能量也由于藻膽素的缺失而受到限制。
美國(guó)華盛頓大學(xué)與PSI公司、中科院水生生物研究所合作,通過(guò)一種基因修飾系統(tǒng)對(duì)Anabaena 33047進(jìn)行處理。通過(guò)MC1000八通道藻類(lèi)培養(yǎng)監(jiān)測(cè)系統(tǒng)模擬不同波長(zhǎng)的高光培養(yǎng)環(huán)境,同步實(shí)時(shí)監(jiān)測(cè)其OD730,表明這種藍(lán)藻可以在高光條件下具有良好的適應(yīng)性。

左圖:不同光質(zhì)、光強(qiáng)、氮素營(yíng)養(yǎng)(A加氮B不加氮)的OD730生長(zhǎng)曲線(xiàn);右圖:MC1000八通道藻類(lèi)培養(yǎng)監(jiān)測(cè)系統(tǒng)
通過(guò)特殊定制的FKM系統(tǒng),研究人員直接測(cè)量了營(yíng)養(yǎng)細(xì)胞和異形胞的藻膽素?zé)晒?。結(jié)果表明,Anabaena 33047 ΔnblA突變株中異形胞的藻膽素?zé)晒馀c營(yíng)養(yǎng)細(xì)胞接近,但野生型異形胞則遠(yuǎn)遠(yuǎn)低于影響細(xì)胞。通過(guò)FKM熒光動(dòng)態(tài)分析,ΔnblA突變株異形胞的藻膽素?zé)晒馐且吧彤愋伟拇蠹s8倍高。這樣高含量的藻膽素,也就表明其可以為固氮過(guò)程提供遠(yuǎn)高于野生型的ATP,顯著提高其固氮能力。這一ZX研究成果發(fā)表于2021年《mBio》。

左圖(A-D):Anabaena 33047 ΔnblA突變株與野生型的明場(chǎng)顯微圖與熒光顯微圖;右圖(E-G):異形胞的藻膽素?zé)晒鈩?dòng)態(tài)分析
未來(lái),科學(xué)家還會(huì)運(yùn)用FKM多光譜熒光動(dòng)態(tài)顯微成像技術(shù)在異形胞、微藻細(xì)胞分化領(lǐng)域確定什么樣的突破呢?請(qǐng)拭目以待。如果您希望了解更多關(guān)于FKM多光譜熒光動(dòng)態(tài)顯微成像技術(shù)的內(nèi)容,請(qǐng)聯(lián)系我們,或訪問(wèn)我們的官網(wǎng)搜索FKM:http://www.eco-tech.com.cn/

小球衣藻葉綠素?zé)晒怙@微成像分析,可見(jiàn)不同細(xì)胞之間的差異及葉綠素在細(xì)胞中的分布:左:小熒光F0;中:ZD熒光Fm;右:ZD光化學(xué)效率Fv/Fm
參考文獻(xiàn):
1. Berman-Frank I, et al. 2001. Segregation of Nitrogen Fixation and Oxygenic Photosynthesis in the Marine Cyanobacterium Trichodesmium. Science, 294: 1534-1537
2. Küpper H, Ferimazova N, ?etlík I, et al. 2004. Traffic Lights in Trichodesmium. Regulation of Photosynthesis for Nitrogen Fixation Studied by Chlorophyll Fluorescence Kinetic Microscopy. Plant Physiology, 135: 2120-2133
3. Ferimazova N, et al. 2013. Regulation of photosynthesis during heterocyst differentiation in Anabaena sp. strain PCC 7120 investigated in vivo at single-cell level by chlorophyll fluorescence kinetic microscopy. Photosynthesis Research, 116(1): 79-91
4. Bandyopadhyay A, et al. 2021. Antenna Modification Leads to Enhanced Nitrogenase Activity in a High Light-Tolerant Cyanobacterium. mBio, 12(6): e03408-21
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