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2025-01-10 10:53:25全自動共聚焦成像系統(tǒng)
全自動共聚焦成像系統(tǒng)是一種高端成像設(shè)備,采用先進的激光共聚焦技術(shù)和自動化控制系統(tǒng)。它能夠?qū)崿F(xiàn)對樣品的非接觸、無損傷、高精度成像,提供高分辨率、高清晰度的三維圖像。該系統(tǒng)支持多種觀察模式和放大倍數(shù),廣泛應(yīng)用于生物學(xué)、材料科學(xué)、醫(yī)學(xué)等領(lǐng)域,用于觀察細胞內(nèi)部的精細結(jié)構(gòu)、材料的微觀形貌及納米級粒子的分布等。全自動共聚焦成像系統(tǒng)以其高效的自動化性能、精確的成像能力和廣泛的應(yīng)用領(lǐng)域,成為科研和技術(shù)開發(fā)中的重要工具。

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2022-12-07 11:47:14貼息貸款丨一體化全自動顯微共聚焦拉曼光譜儀 RM5
英國愛丁堡儀器一體化全自動顯微共聚焦拉曼光譜儀 RM5儀器介紹RM5顯微共聚焦拉曼光譜儀是一款緊湊型的全自動顯微拉曼光譜儀,可以內(nèi)置多達三個激光器。具有可調(diào)節(jié)的電動狹縫和多位可調(diào)節(jié)的共聚焦針孔,用于獲取更高的圖像清晰度,更好的熒光背景抑 制和更靈活的應(yīng)用條件優(yōu)化。適用于新型材料、生物醫(yī)藥、物質(zhì)鑒定等方面的測量,提供超高的光譜分辨率、空間分辨率和靈敏度,結(jié)合拉曼成像技術(shù)(2D/3D/Surface Mapping),實現(xiàn)全方位拉曼信息檢測。儀器特點+ 緊湊型一體化分析級拉曼光譜儀+ 多種配置一體化耦合+  內(nèi)置標(biāo)準物質(zhì)和自動校準功能+  真共聚焦技術(shù)+  功能強大的Ramacle?軟件+  高性能附件兼容(偏振組件、顯微鏡、樣品臺等)應(yīng)用范圍生物醫(yī)藥   藥品成分和分布狀態(tài)分析;   原料檢定;   生物相容性;   藥物/細胞相互作用;鋁箔上含有痕量撲熱息痛顆粒的拉曼成像圖植物細胞木質(zhì)素成像分布分析,A.白光圖;B.成像圖能源光伏以及半導(dǎo)體材料表征   薄膜太陽能電池結(jié)構(gòu)分析;   原位技術(shù)檢測充放電;   電極材料的缺陷分析;   材料本征應(yīng)力/應(yīng)變的特征;分散碳納米管在晶圓上分布的拉曼成像(左)+硅基石墨烯單晶拉曼成像(右)
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2023-08-21 11:50:20激光共聚焦熒光顯微鏡 活體熒光物質(zhì)檢查
激光共聚焦顯微鏡,簡稱CLSM(Confocal Laser Scanning Microscopy),是一種利用激光共振效應(yīng)進行成像的顯微鏡。它通過使用激光束掃描樣品的不同層面,將所得到的圖像合成成一幅清晰的三維圖像。與傳統(tǒng)顯微鏡相比,激光共聚焦顯微鏡具有更高的分辨率和更強的穿透能力,可以觀察到更加細微的結(jié)構(gòu)和更深層次的物質(zhì)。在活體熒光物質(zhì)的檢查中,激光共聚焦顯微鏡發(fā)揮了重要的作用。通過標(biāo)記活體細胞或組織的特定結(jié)構(gòu)或分子,激光共聚焦顯微鏡可以實時觀察到這些結(jié)構(gòu)或分子的活動和分布情況。在生物醫(yī)學(xué)領(lǐng)域,它可以用于觀察細胞的生長、分裂和死亡過程,研究細胞信號傳導(dǎo)和分子交互作用等。在藥物研發(fā)中,它可以用于觀察藥物在活體細胞或組織中的分布情況,評估藥物的療效和毒性。此外,在神經(jīng)科學(xué)領(lǐng)域,激光共聚焦顯微鏡可以用于觀察神經(jīng)元的活動和連接,揭示大腦的工作機制。 NCF950激光共聚焦顯微鏡較寬場熒光顯微鏡的優(yōu)點:l 能夠通過熒光標(biāo)本連續(xù)生產(chǎn)?。?.5至1.5微米)的光學(xué)切片,厚度范圍可達50微米或更大。(主要優(yōu)點)l 控制景深的能力。l能夠從樣品中分離和收集焦平面,從而消除熒光樣品通常看到的焦外“霧霾",非共焦熒光顯微鏡下無法檢測到。(最重要的特點)l  從厚試樣收集連續(xù)光學(xué)切片的能力。l 通過三維物體收集一系列圖像,用于二維或三維重建。l收集雙重和三重標(biāo)簽,精確的共定位。l 用于對在不透明的圖案化基底上生長的熒光標(biāo)記細胞之間的相互作用進行成像。l  有能力補償自發(fā)熒光。 耐可視共聚焦成像效果圖                                                          尼康共聚焦成成像效果圖NCF950激光共聚焦顯微鏡應(yīng)用,共聚焦顯微鏡在以下研究領(lǐng)域中應(yīng)用較為廣泛:1、細胞生物學(xué):細胞結(jié)構(gòu)、細胞骨架、細胞膜結(jié)構(gòu)、流動性、受體、細胞器結(jié)構(gòu)和分布變化、細胞凋亡;2、生物化學(xué):酶、核酸、FISH、受體分析3、藥理學(xué):藥物對細胞的作用及其動力學(xué);4、生理學(xué):膜受體、離子通道、離子含量、分布、動態(tài);5、遺傳學(xué)和組胚學(xué):細胞生長、分化、成熟變化、細胞的三維結(jié)構(gòu)、染色體分析、基因表達、基因診斷;6、神經(jīng)生物學(xué):神經(jīng)細胞結(jié)構(gòu)、神經(jīng)遞質(zhì)的成分、運輸和傳遞;7、微生物學(xué)和寄生蟲學(xué):細菌、寄生蟲形態(tài)結(jié)構(gòu);8、病理學(xué)及病理學(xué)臨床應(yīng)用:活檢標(biāo)本的快速診斷、腫瘤診斷、自身免疫性疾病的診斷;9、生物學(xué)、免疫學(xué)、環(huán)境醫(yī)學(xué)和營養(yǎng)學(xué)。NCF950激光共聚焦顯微鏡配置NCF950激光共聚焦配置表激光器激光405 nm、488 nm、561 nm、640 nm探測器波長:400-750nm,探測器:3個獨立的熒光檢測通道;1個DIC透射光檢測通道掃描頭最大像素大?。?096 x 4096 掃描速度:2 fps(512 x 512像素,雙向),18 fps(512 x 32像素,雙向),圖像旋轉(zhuǎn): 360°掃描模式X-T, Y-T, X-Y, X-Y-Z, X-Y-Z-T針孔無級變速六邊形電動針孔;調(diào)節(jié)范圍:0-1.5毫米共焦視場φ18mm內(nèi)接正方形圖像位深12bits配套顯微鏡NIB950全電動倒置顯微鏡光學(xué)系統(tǒng)NIS60無限遠光學(xué)系統(tǒng)(F200)目鏡(視野)10×(25),EP17.5mm,視度可調(diào)-5~+5,接口Φ30觀察鏡筒鉸鏈式三目觀察鏡筒,45度傾斜,瞳距47-78mm,目鏡接口Φ30,固定視度;1)目/攝切換:(100/0,50/50,0/100);2)目視/關(guān)閉目視/可調(diào)焦勃氏鏡NIS60物鏡10×復(fù)消色差物鏡,NA=0.45 WD=4.0 蓋玻片=0.1720×復(fù)消色差物鏡,NA=0.75 WD=1.1 蓋玻片=0.1760×半復(fù)消色差物鏡,NA=1.40 WD=0.14 蓋玻片=0.17 油鏡100×復(fù)消色差物鏡,NA=1.45 WD=0.13 蓋玻片=0.17 油鏡物鏡轉(zhuǎn)換器電動六孔轉(zhuǎn)換器(擴展插槽),M25×0.75聚光鏡6孔位電動控制:NA0.55,WD26;相襯(10/20,40,60選配)DIC(10X,20X/40X)選配.空孔照明系統(tǒng)透射柯拉照明,10W LED照明;落射照明:寬場光纖照明6孔位電動熒光轉(zhuǎn)盤(B,G,U標(biāo)配);電動熒光光閘;中間倍率切換手動1X,1.5X、共焦切換機身端口分光比:左側(cè):目視=100:0;右側(cè):目視=100:0;平臺電動控制:行程范圍130 mm x100 mm (臺面325 mm x 144 mm )最大速度:25mm/s;分辨率:0.1μm - 重復(fù)精度:3μm。機械可調(diào)樣品夾板調(diào)焦系統(tǒng)同軸粗微動升降機構(gòu),行程:焦點上7下2;粗調(diào)2mm/圈,微調(diào)0.002mm/圈;可手動和電動控制,電動控制時,最小步進0.01um;DIC插板10X,20X,40X插板;可放置于轉(zhuǎn)換器插槽;選配控制搖桿,控制盒,USB連接線軟件軟件:NOMIS Advanced C圖像顯示/圖像處理/分析2D/3D/4D圖像分析,經(jīng)時變化分析,三維圖像獲得及正交顯示,圖像拼接,多通道彩色共聚焦圖像
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2025-09-05 13:00:22植物熒光成像系統(tǒng)是什么
植物熒光成像系統(tǒng)是一套通過激發(fā)與捕獲葉片熒光信號,在空間上展示植物生理狀態(tài)的成像平臺。它以葉綠素?zé)晒鉃楹诵?,結(jié)合高效的光源、精密的探測器與數(shù)據(jù)處理工具,能夠在不破壞樣本的前提下,評估光合效率、應(yīng)激響應(yīng)與營養(yǎng)狀況。本文圍繞系統(tǒng)的工作原理、關(guān)鍵組成、常用指標(biāo)與應(yīng)用場景展開,幫助讀者理解其在植物研究與農(nóng)藝改良中的應(yīng)用價值。 系統(tǒng)的核心原理是用特定波段的光激發(fā)葉綠素及其他熒光色素,隨后捕獲發(fā)射信號。常見激發(fā)波段覆蓋藍光與可見光區(qū),發(fā)射峰多集中在680–750 nm區(qū)間。硬件層面通常包含激發(fā)光源、光學(xué)分光與濾光件、熒光探測器(如CCD/CMOS相機)以及數(shù)據(jù)處理單元。為獲得均勻且可比的圖像,系統(tǒng)會進行暗場和背景校準,并可按需要設(shè)置單光路或多通道,實現(xiàn)對葉面不同區(qū)域的定量分析。 在定量指標(biāo)方面,具代表性的是葉綠素?zé)晒鈪?shù),如Fv/Fm、ΦPSII、qP與NPQ等,通過成像可獲得葉片的空間分布信息。Fv/Fm反映潛在光化學(xué)效率,ΦPSII指示實際光合電子傳輸效率,NPQ揭示熱耗散過程。結(jié)合時間分辨或多光譜成像,還能對干旱、氮缺乏、病害侵染等脅迫引發(fā)的光合變化進行早期診斷,提升作物表型分析和田間健康監(jiān)測的有效性。 在設(shè)備選擇與數(shù)據(jù)分析方面,應(yīng)關(guān)注光譜覆蓋、分辨率、成像速度與熱穩(wěn)定性。激發(fā)光源需覆蓋目標(biāo)波段并保持均勻,濾光系統(tǒng)要有效區(qū)分激發(fā)與發(fā)射光,探測器具備低噪聲與高動態(tài)范圍。數(shù)據(jù)軟件應(yīng)支持圖像校正、ROI提取、指標(biāo)計算以及與實驗設(shè)計平臺的對接,便于實現(xiàn)高通量分析和跨場景對比。對于田間應(yīng)用,便攜性、抗干擾性與數(shù)據(jù)傳輸能力也同樣重要。 植物熒光成像系統(tǒng)廣泛服務(wù)于基礎(chǔ)研究、作物育種與智慧農(nóng)業(yè)。選型時可結(jié)合研究目標(biāo)和預(yù)算:若關(guān)注全局光合效率分布,優(yōu)先考慮大場景成像與高通量能力;若需要深入的光化學(xué)參數(shù),則應(yīng)選擇多波段激發(fā)與高信噪比探測的設(shè)備。并結(jié)合樣本形態(tài)、維護成本與數(shù)據(jù)分析能力,必要時可搭配自動化樣品臺與云端分析平臺。 未來,隨著成像技術(shù)與數(shù)據(jù)智能的深度融合,植物熒光成像系統(tǒng)在實時監(jiān)測、病害早篩與表型數(shù)據(jù)庫建設(shè)方面將發(fā)揮更大作用。通過標(biāo)準化測量流程與開放數(shù)據(jù)接口,研究者與農(nóng)藝運營者能夠?qū)崿F(xiàn)跨場景的比較分析,推動育種改進與生產(chǎn)效益的提升。
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2025-05-16 11:15:25掃描電鏡怎么聚焦
掃描電鏡怎么聚焦 掃描電鏡(SEM,Scanning Electron Microscope)作為一種強大的分析工具,廣泛應(yīng)用于材料科學(xué)、生物學(xué)、半導(dǎo)體等領(lǐng)域。其核心功能之一就是通過的聚焦技術(shù),確保掃描電子束能夠高效且清晰地探測樣品表面特征,從而提供高分辨率的圖像和數(shù)據(jù)。要獲得高質(zhì)量的掃描圖像,正確的聚焦至關(guān)重要。在這篇文章中,我們將詳細探討掃描電鏡的聚焦原理、聚焦過程中常見的問題以及如何通過合理調(diào)整參數(shù)確保佳成像效果。 掃描電鏡的聚焦原理 掃描電鏡的基本原理是利用電子束掃描樣品表面,并通過探測二次電子、背散射電子等信號來形成圖像。電鏡中的電子束必須聚焦在樣品的表面,以獲得清晰的圖像。聚焦過程通過調(diào)節(jié)電子束的大小、形狀和射向樣品的角度來實現(xiàn),這需要精確的控制電子鏡頭系統(tǒng)。在SEM中,電子鏡頭通常由多個磁透鏡構(gòu)成,每個透鏡通過調(diào)整電流來影響電子束的聚焦度。 如何聚焦掃描電鏡 調(diào)節(jié)光圈:光圈控制電子束的大小,它直接影響到束流的強度和成像的深度。當(dāng)光圈調(diào)整不當(dāng)時,電子束可能會擴散或聚焦不清,導(dǎo)致圖像模糊。通常,使用較小的光圈會提供更高的分辨率,但也會減小視場。 調(diào)整物鏡透鏡:掃描電鏡通過物鏡透鏡進行精確聚焦。物鏡透鏡的調(diào)節(jié)主要是通過改變電流強度來實現(xiàn)。當(dāng)樣品距離透鏡不合適時,圖像會顯得不清晰,因此調(diào)整物鏡透鏡的位置是確保清晰成像的關(guān)鍵。 對焦的細節(jié)調(diào)節(jié):在實際操作中,電鏡通常配備精細的對焦系統(tǒng),允許用戶在微米甚至納米級別精確調(diào)節(jié)焦點。通過在圖像屏幕上觀察樣品表面,可以實時調(diào)整焦距,直到圖像清晰為止。 常見的聚焦問題及其解決方法 圖像模糊:這通常是由于對焦不準或電子束未能有效聚焦所致。解決方法是通過調(diào)整物鏡透鏡和光圈來重新聚焦,或者檢查電鏡的電子源是否穩(wěn)定。 樣品表面損傷:當(dāng)聚焦過于集中時,電子束的能量過高可能會對樣品表面造成損害。為避免這種情況,應(yīng)適當(dāng)減小束流并適當(dāng)調(diào)節(jié)對焦。 焦點漂移:由于樣品或電鏡系統(tǒng)的溫度變化,焦點可能會發(fā)生漂移。為了克服這個問題,使用精細的對焦調(diào)節(jié)系統(tǒng)是非常重要的。 如何確保佳聚焦效果 在掃描電鏡的操作中,確保佳聚焦效果的關(guān)鍵是細致的調(diào)節(jié)和耐心的操作。除了基礎(chǔ)的物鏡調(diào)節(jié)和光圈控制外,操作員應(yīng)當(dāng)熟悉樣品的特性和掃描參數(shù)的影響,并能夠根據(jù)實際情況調(diào)整聚焦參數(shù)。保持電鏡系統(tǒng)的穩(wěn)定性,定期校準設(shè)備,也能大大提高聚焦效果和圖像質(zhì)量。 掃描電鏡的聚焦是一個精細而復(fù)雜的過程,只有通過對電子束的準確控制與合理調(diào)節(jié),才能確保獲得高質(zhì)量的掃描圖像。掌握這一過程的技巧,能夠極大提升掃描電鏡在科學(xué)研究和工業(yè)應(yīng)用中的精度和可靠性。
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2023-08-21 11:41:24熱點應(yīng)用丨OLED的光致發(fā)光和電致發(fā)光共聚焦成像
要點光致發(fā)光和電致發(fā)光是有機發(fā)光二極管(OLED)視覺顯示發(fā)展的重要技術(shù)。與共聚焦顯微鏡相結(jié)合,使用RMS1000共聚焦顯微拉曼光譜儀對OLED器件的光電特性進行成像研究。光譜和時間分辨成像獲得了比宏觀測試更詳細的器件組成和質(zhì)量信息。介紹近年來,有機發(fā)光二極管(OLED)已成為高端智能手機和電視全彩顯示面板的領(lǐng)先技術(shù)之一1。使用量的快速增長是因為OLED提供了比液晶顯示器(LCD)更卓 越的性能。例如,它們更薄、更輕、更靈活、功耗更低、更明亮2。在典型的OLED器件中,電子和空穴被注入到傳輸層中,然后在中心摻雜發(fā)光層中復(fù)合。這種復(fù)合產(chǎn)生的能量通過共振轉(zhuǎn)移到摻雜分子中,從而使其發(fā)光。OLED發(fā)光的顏色取決于發(fā)光層中所摻雜分子的化學(xué)結(jié)構(gòu)。當(dāng)新的有機電致發(fā)光器件開發(fā)出來時,可以利用光致發(fā)光(PL)和電致發(fā)光(EL)光譜來表征單個元件和整個器件的光電特性。在本文中,RMS1000共聚焦顯微拉曼光譜儀用于表征四種成像模式下OLED器件的光電特性:PL、EL、時間分辨PL(TRPL)和時間分辨EL(TREL)。使用共聚焦顯微拉曼光譜儀來表征OLED的光譜和時間分辨特性獲得了比宏觀測試更詳細的信息。材料和方法測試樣品為磷光OLED器件,由圣安德魯斯大學(xué)有機半導(dǎo)體光電研究組提供。將樣品放置在冷熱臺(LINKAM)上,通過兩個鎢探針連接到器件電極上實現(xiàn)成像。使用RMS1000共聚焦顯微拉曼光譜儀進行PL、EL、時間分辨PL(TRPL)和時間分辨EL(TREL)成像,如圖1。圖1  PL、TRPL、EL和TREL成像的實驗裝置。將裝載樣品的冷熱臺放置在顯微鏡樣品臺上,如圖2所示。對于PL測試,使用532 nm CW激光器和背照式CCD探測器;對于TRPL測試,使用外部耦合的EPL-405皮秒脈沖激光器、MCS模式和快速響應(yīng)的PMT。對于EL測試,使用Keithley 2450 SMU向OLED器件加電壓,并用CCD探測器檢測;對于TREL測試,使用Tektronix 31102 AFG向OLED加一系列短脈沖電壓,使用MCS模式測試每個脈沖下的衰減。圖2  (a)安裝在RMS1000上的冷熱臺;(b) OLED器件電致發(fā)光寬場成像。測試結(jié)果與討論大面積光致發(fā)光和電致發(fā)光光譜成像OLED首次采用PL和EL光譜相結(jié)合的方法進行研究。當(dāng)使用共聚焦顯微拉曼光譜儀成像時,可以表征材料在整個器件中的分布以及在發(fā)光強度和顏色均勻性方面的整體質(zhì)量。圖3中的PL成像和相應(yīng)的光譜提供了器件上4個區(qū)域發(fā)光層分布的信息,還顯示了電極的位置。圖3  (a)OLED器件的PL光譜強度成像;(b)a中標(biāo)記的點1和點2的PL光譜。白色和灰色代表PL強度,顯示了有機發(fā)光層的位置?;疑珔^(qū)域為發(fā)光層被頂部電極覆蓋的位置。在頂部電極穿過發(fā)光層的地方,PL強度降低為未覆蓋區(qū)域強度的一半以下。這是由于頂部電極材料削弱了激光強度和光致發(fā)光強度。對于EL成像,鎢探針連接到與區(qū)域2相交的電極上。圖4中得到的EL圖像和相應(yīng)的光譜表明了EL發(fā)光僅發(fā)生在區(qū)域2中的發(fā)光層與電極重疊的區(qū)域。在PL成像中,空間分辨率主要取決于樣品上激光光斑的大小。而在EL成像中,由于沒有激光,因此是通過改變共焦針孔直徑來改變空間分辨率(將針孔直徑減小到25 μm)。圖4  (a)OLED器件的EL光譜強度成像;(b)a中標(biāo)記的點1和點2的EL光譜。EL強度在整個有源像素上不均勻,這對器件的質(zhì)量有影響。在區(qū)域外邊緣有兩個(白色)垂直條帶,強度比其余部分強。此外,存在許多EL強度降低的非發(fā)光區(qū)域。這表明器件有缺陷,理想情況下,OLED將在每個像素上呈現(xiàn)出密集和均勻的發(fā)光。高分辨率光致發(fā)光和電致發(fā)光光譜成像為了進一步研究,使用PL和EL對EL有源像素上的較小區(qū)域(圖5a和圖5b)進行高分辨成像。圖5b網(wǎng)格內(nèi)的上部區(qū)域是發(fā)光層與電極重疊的地方,下部區(qū)域是單獨的發(fā)光層。圖5c為 PL強度成像,再次表明被電極覆蓋的發(fā)光層PL強度小于未覆蓋的發(fā)光層。PL峰值波長圖像(圖5d)表明,有電極覆蓋的發(fā)光層與未覆蓋的發(fā)光層(611 nm)相比,PL發(fā)射峰發(fā)生紅移(620 nm)。峰值波長的變化表明在不同的區(qū)域中能級不同。圖5  (a) OLED器件電致發(fā)光寬場成像;(b)a網(wǎng)格內(nèi)的高分辨率寬場成像;(c)PL強度成像;(d)相同區(qū)域的PL峰值波長成像;(e)EL強度成像;(f)相同區(qū)域的EL峰值波長成像。EL成像顯示,與其余部分相比發(fā)射強度較弱的缺陷(圖5e)波長發(fā)生明顯紅移(圖5f)。這是由于缺陷處的EL能帶的信號強度降低以及在662 nm處EL能帶信號強度同時增加引起的。另外,在EL有源區(qū)域的最 底部的區(qū)域中,發(fā)生藍移,這與在PL圖像上看到的波長變化一致。高分辨率時間分辨光致發(fā)光和電致發(fā)光成像為獲得額外信息,在同一區(qū)域進行TRPL和TREL成像,如圖6所示。分別用激光脈沖和電脈沖,在MCS模式下測試614 nm處OLED的PL和EL衰減。利用單指數(shù)模型擬合衰減曲線。在圖6a的TRPL成像中,EL活性區(qū)域(上部區(qū)域)中的PL壽命比EL非活性區(qū)域(下部區(qū)域)中的PL壽命短大約200 ns。如圖6c所示,分別為800 ns和600 ns。這里觀察到與圖4中PL強度和波長圖像的類似梯度,沿圖向下方向的發(fā)射強度增強,并且發(fā)生了藍移。因此,根據(jù)TRPL數(shù)據(jù)可得:當(dāng)光激發(fā)時,通過摻雜帶可獲得不同的能級。在圖6b中的TREL成像中,整個區(qū)域的壽命相似,大約為470 ns。發(fā)現(xiàn)EL壽命顯著短于相同區(qū)域的PL壽命。圖6   (a)OLED的時間分辨PL成像;(b)OLED的時間分辨EL成像;(c)a中選定區(qū)域的PL衰減曲線;(d)b中圖像的EL衰減曲線。結(jié)論RMS1000共聚焦顯微拉曼光譜儀用于測試OLED器件的PL、EL、TRPL和TREL成像。這些不同的成像模式提供了關(guān)于發(fā)光層和電極在整個器件中位置的詳細信息,在工作條件下器件的發(fā)光強度和顏色均勻性,以及關(guān)于PL和EL過程中帶隙能量的相對信息。參考文獻1. A. Salehi et al., Recent Advances in OLED Optical Design, Adv. Funct. Mater., 2019, 29, 1808803, DOI: 10.1002/adfm.201808803.2. J. M. Ha et al., Recent Advances in Organic Luminescent Materials with Narrowband Emission, NPG Asia Mater., 2021, 13, 1–36, DOI: 10.1038/s41427-021-00318-8.天美分析更多資訊
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