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2025-01-10 17:03:03高分辨率顯微技術: 高分辨率顯微技術是一種能夠獲取樣品高分辨率圖像的顯微技術，通過提高光學系統(tǒng)的分辨率或采用電子顯微鏡等先進技術，實現(xiàn)對微小結構或納米級樣品的精細觀察。該技術廣泛應用于生物學、材料科學、半導體等領域，可幫助科學家和研究人員揭示微觀世界的奧秘。高分辨率顯微技術不僅提高了觀測精度，還為科學研究和技術創(chuàng)新提供了有力支持。如需更多信息，請訪問儀器網(wǎng)（m.sdczts.cn）。

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捕捉神經(jīng)遞質(zhì)受體和離子通道

在高分辨率下對受體和離子通道在神經(jīng)元突觸前后區(qū)的定位和共定位問題進行定性定量分析時，這些技術得到廣泛應用。

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2022-07-06
高分辨率顯微技術冷凍斷裂復型標記(SDS-FRL)技術高壓冷凍儀
捕捉神經(jīng)遞質(zhì)受體和離子通道

在SDS-FRL技術中，我們先用高壓冷凍儀（徠卡EM ICE）對腦組織進行冷凍，然后使用復型儀（徠卡EM ACE900）對冷凍樣本進行冷凍斷裂。

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2022-12-19
高分辨率顯微技術包埋后免疫膠體金法高壓冷凍儀（徠卡EM ICE）復型儀（徠卡EM ACE900）

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: 瑞氏色素，可用于顯微技術和細菌學]; 國外歐洲; 面議; 上海安譜實驗科技股份有限公司
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高分辨率顯微技術問答

2025-04-23 14:15:19電子探針顯微分析方法有哪些？: 電子探針顯微分析方法電子探針顯微分析方法（Electron Probe Microanalysis, EPMA）是一種利用電子束與樣品相互作用原理來進行元素分析和成分分析的技術。該技術廣泛應用于材料科學、地質(zhì)學、冶金學等領域，是研究微觀結構、元素分布以及樣品成分的關鍵工具。通過高精度的分析，電子探針顯微分析方法能夠提供極為詳盡的樣品元素信息，并為科學研究和工業(yè)應用提供可靠的數(shù)據(jù)支持。本文將介紹電子探針顯微分析的基本原理、應用領域及其優(yōu)勢。電子探針顯微分析的基本原理電子探針顯微分析方法基于電子束與樣品相互作用后產(chǎn)生的各種信號，如特征X射線、二次電子和背散射電子等。通過測量這些信號，能夠獲得樣品的元素組成和空間分布信息。具體來說，電子探針顯微分析通過聚焦電子束在樣品表面激發(fā)特征X射線，這些X射線的能量與元素的原子結構相對應，因此可以通過對X射線進行能量分析來確定樣品中各元素的種類和含量。在實際操作中，電子束的能量通常設置在10-30kV之間，能夠深入樣品的表面層并激發(fā)X射線。這些X射線的強度與樣品中相應元素的濃度成正比，通過對X射線譜圖的定量分析，研究人員可以精確地測定元素的分布和含量。電子探針顯微分析的應用領域材料科學電子探針顯微分析技術在材料科學中有著廣泛應用。尤其是在金屬合金、陶瓷、復合材料等的成分分析中，EPMA能夠提供高空間分辨率和定量分析能力。通過對材料微觀結構的研究，科學家們可以了解材料的性能、相變以及在不同條件下的行為，從而優(yōu)化材料的設計和性能。地質(zhì)學在地質(zhì)學研究中，電子探針顯微分析方法被廣泛應用于礦物學和巖石學研究。通過分析礦物和巖石樣品的元素組成，EPMA能夠幫助地質(zhì)學家解讀地質(zhì)過程、巖漿活動、礦產(chǎn)資源的成因以及沉積環(huán)境等信息，為資源勘探和環(huán)境保護提供有力支持。生命科學在生物醫(yī)學領域，電子探針顯微分析也有著重要的應用。通過對細胞和組織樣本進行元素分析，研究人員可以探索生物體內(nèi)微量元素的分布，幫助揭示生物體的代謝過程和疾病機制。例如，通過EPMA分析癌細胞與正常細胞中的元素差異，有助于癌癥早期診斷和策略的優(yōu)化。電子探針顯微分析的優(yōu)勢與傳統(tǒng)的分析方法相比，電子探針顯微分析在空間分辨率和分析精度方面具有明顯優(yōu)勢。EPMA具有極高的空間分辨率，能夠?qū)ξ⒚咨踔良{米尺度的樣品進行高精度分析，適用于復雜的微觀結構研究。EPMA具備較強的元素分析能力，能夠?qū)Χ喾N元素進行定性和定量分析，尤其適合于分析復雜樣品中的微量元素。EPMA分析無需對樣品進行復雜的化學預處理，能夠直接在固體樣品表面進行分析，具有較高的分析效率。總結電子探針顯微分析方法是一項高精度的材料分析技術，憑借其的空間分辨率和元素分析能力，在多個領域發(fā)揮著重要作用。從材料科學到生命科學，EPMA技術為研究者提供了深入理解樣品成分和微觀結構的強大工具。隨著技術的不斷進步，電子探針顯微分析在科研和工業(yè)中的應用前景將更加廣闊，并為推動科技創(chuàng)新和產(chǎn)業(yè)發(fā)展作出更大的貢獻。

2023-03-16 14:23:50基于共聚焦顯微技術的顯微鏡和熒光顯微鏡的區(qū)別: 熒光顯微鏡主要應用在生物領域及醫(yī)學研究中，能得到細胞或組織內(nèi)部微細結構的熒光圖像，在亞細胞水平上觀察諸如Ca2+ 、PH值，膜電位等生理信號及細胞形態(tài)的變化，是形態(tài)學，分子生物學，神經(jīng)科學，藥理學，遺傳學等領域中新一代強有力的研究工具。以共聚焦技術為原理的共聚焦顯微鏡，是用于對各種精密器件及材料表面進行微納米級測量的檢測儀器。材料科學的目標是研究材料表面結構對于其表面特性的影響。因此，高分辨率分析表面形貌對確定表面粗糙度、反光特性、摩擦學性能及表面質(zhì)量等相關參數(shù)具有重要意義。共焦技術能夠測量各種表面反射特性的材料并獲得有效的測量數(shù)據(jù)。VT6000共聚焦顯微鏡基于共聚焦顯微技術，結合精密Z向掃描模塊、3D 建模算法等，可以對器件表面進行非接觸式掃描并建立表面3D圖像，實現(xiàn)器件表面形貌3D測量。在材料生產(chǎn)檢測領域中能對各種產(chǎn)品、部件和材料表面的面形輪廓、表面缺陷、磨損情況、腐蝕情況、平面度、粗糙度、波紋度、孔隙間隙、臺階高度、彎曲變形情況、加工情況等表面形貌特征進行測量和分析。應用1.MEMS微米和亞微米級部件的尺寸測量，各種工藝（顯影，刻蝕，金屬化，CVD， PVD，CMP等）后表面形貌觀察，缺陷分析。2.精密機械部件，電子器件微米和亞微米級部件的尺寸測量，各種表面處理工藝，焊接工藝后的表面形貌觀察，缺陷分析，顆粒分析。3.半導體/ LCD各種工藝（顯影，刻蝕，金屬化，CVD，PVD，CMP等）后表面形貌觀察，缺陷分析非接觸型的線寬，臺階深度等測量。4.摩擦學，腐蝕等表面工程磨痕的體積測量，粗糙度測量，表面形貌，腐蝕以及亞微米表面工程后的表面形貌。

2023-06-05 16:41:32鎖相放大器用于生物樣品雙通道和多儀器模式SRS顯微技術的研究: 鎖相放大器用于生物樣品雙通道和多儀器模式SRS顯微技術的研究一．簡介拉曼散射光譜為生物分子的特異性檢測和分析提供了化學鍵的固有振動指紋。那么什么是受激拉曼散射顯微鏡？受激拉曼散射(SRS)顯微技術是一種相對較新的顯微技術，是一種相干拉曼散射過程，允許使用光譜和空間信息進行化學成像[18]，由于相干受激發(fā)射過程[1]能產(chǎn)生約103-105倍的增強拉曼信號，可以實現(xiàn)高達視頻速率(約25幀/s)[2]的高速成像。SRS顯微鏡繼承了自發(fā)拉曼光譜的優(yōu)點, 是一種能夠快速開發(fā)、label-free的成像技術，同時具有高靈敏度和化學特異性[3-6], 在許多生物醫(yī)學研究的分支顯示出應用潛力,包括細胞生物學、脂質(zhì)代謝、微生物學、腫瘤檢測、蛋白質(zhì)錯誤折疊和制藥[7-11]。特別的是，SRS在對新鮮手術組織和術中診斷的快速組織病理學方面表現(xiàn)出色，與傳統(tǒng)的H&E染色幾乎完全一致[12,13]。此外，SRS能夠根據(jù)每個物種的光譜信息，對多種組分的混合物進行定量化學分析[6,7,14]。盡管在之前的研究[17]中已經(jīng)研究了痛風中MSU的自發(fā)拉曼光譜，但微弱的信號強度阻礙了其用于快速組織學的應用。因此，復旦大學附屬華山醫(yī)院華英匯教授和復旦大學物理學系季敏標教授團隊將受激拉曼散射顯微技術用于人體痛風組織病理成像[15]。研究人員應用SRS和二次諧波（SHG）顯微鏡同時表征了晶型和非晶型MSU。在普通光鏡下，MSU晶體呈典型的針狀。這些晶體在拉曼峰630 cm-1的SRS上很容易成像，當SRS頻率稍微偏離振動共振時，表現(xiàn)出了高化學特異性的非共振行為，SRS信號消失。已知SHG對非中心對稱結構敏感，包括MSU晶體和[17]組織中的膠原纖維。然而，由于拉曼極化率張量和二階光學磁化率對晶體對稱性[16]的依賴，研究者們發(fā)現(xiàn)線偏振光光束在晶體取向上傾向于產(chǎn)生SRS和SHG的強各向異性信號。因此，研究者們對泵浦光束和斯托克斯光束都應用了圓偏振，以消除MSU晶體和膠原纖維的定向效應。Moku:Pro 的鎖相放大器 (LIA) 為受激拉曼散射 (SRS) 顯微鏡實驗中的自外差信號檢測提供了一種直觀、精確且穩(wěn)健的解決方案。高質(zhì)量的 LIA 是 SRS 顯微鏡實驗中具有調(diào)制傳輸檢測方案的關鍵硬件組件。在此更新的案例研究中，我們提供了有關雙 LIA 應用程序的更多詳細信息和描述。由于SRS 是一種相干拉曼散射過程，允許使用光譜和空間信息進行化學成像[18]。它使用兩個同步脈沖激光器，即泵浦和斯托克斯（圖 1）相干地激發(fā)分子的振動。當入射到樣品上的兩束激光的頻率差與目標分子的振動頻率相匹配時，就會發(fā)生 SRS 過程。振動激發(fā)的結果是泵浦光束將失去光子，而斯托克斯光束將獲得光子。當檢測到泵浦光束的損失時，這稱為受激拉曼損失 (SRL) 檢測。強度損失 ΔI?/I? 通常約為 10 -7 -10 -4，遠小于典型的激光強度波動。為了克服這一挑戰(zhàn)，需要一種高頻調(diào)制和相敏檢測方案來從嘈雜的背景中提取 SRS 信號[19]。在 SRL 檢測方案中，斯托克斯光束以固定頻率調(diào)制，由此產(chǎn)生的調(diào)制傳輸?shù)奖闷止馐?LIA 檢測。圖 1：受激拉曼損耗檢測方案。檢測到由于 SRS 引起的 Stokes 到泵浦光束的調(diào)幅傳輸。演示的泵浦光束具有 80 MHz 的重復率，Stokes 光束具有相同的 80 MHz 重復率，但也以 20 MHz 進行調(diào)制。Δpump 是 LIA 在此檢測方案中提取的內(nèi)容二．實驗裝置使用的激光系統(tǒng)能夠輸出兩個 80 MHz 的激光脈沖序列：斯托克斯光束在 1030 nm，泵浦光束在 790 nm。激光輸出也用于同步調(diào)制：80 MHz 參考被發(fā)送到分頻器以生成 20 MHz TTL 輸出。這些 20 MHz 輸出被使用兩次：一次作為電光調(diào)制器調(diào)制斯托克斯光束的驅(qū)動頻率，另一次作為外部鎖相環(huán)的 LIA 輸入通道 2（B 中）的參考。泵浦光束由硅光電二極管檢測，然后被發(fā)送到 LIA 的輸入通道 1（In A）。來自輸出通道 1（Out A）的信號被發(fā)送到數(shù)據(jù)采集卡以進行圖像采集。來自輸出通道 2 (Out B) 的信號被最小化（通過調(diào)整相移）。 2.1 單通道鎖相放大器配置圖 2：典型的鎖定放大器配置設置圖 2 演示了用于 SRS 顯微鏡實驗的 LIA 的初始設置。在初始設置時，必須重新獲取鎖相環(huán)。輸入均配置為 AC：50 歐姆。通過調(diào)整相位度數(shù)優(yōu)化相移 (Df)，直到 Out A zui大化（正值）并且 Out B zui小化（接近零）。探針A顯示對應于 DMSO zui高信號峰 (2913 cm-1 ) 的 SRS 信號，并zui大化輸出 A 的 103.3 mV。探針B表示正交輸出，最小化為零。一旦 LIA 針對校準溶劑進行了優(yōu)化，樣品就可以進行成像了。圖 3：2930 cm -1拉曼躍遷處的 SRS HeLa 細胞圖像圖 3 是使用 Moku:Pro 鎖相放大器拍攝的 HeLa 細胞圖像。顯示的圖像是從 SRS 圖像生成的，拉曼位移為 2930cm-1，對應于蛋白質(zhì)峰。低通濾波器設置為 40 kHz，對應于約4μs 的時間常數(shù)?？梢愿鶕?jù)SRS信號大小增加或減少增益。2.2 雙通道成像Moku:Pro 的 LIA 也適用于實時雙色 SRS 成像。這是通過在 SRS 成像中應用正交調(diào)制并檢測LIA的X和Y輸出來執(zhí)行的。在這種情況下，斯托克斯調(diào)制有兩個部分：一個 20 MHz 脈沖序列生成SRS信號，另一個 20 MHz 脈沖序列具有90°相移，生成另一個針對不同拉曼波段的SRS信號[3]。由于90°相移，兩個通道（Out A和Out B）彼此正交，可以同時獲取兩個SRS圖像而不會受到干擾。 4：使用正交調(diào)制和輸出在兩個不同的拉曼躍遷下同時獲得鼠腦樣本的雙通道 SRS 圖像圖 4 是利用雙通道X&Y輸出同時在2930 cm -1和 2850 cm -1處生成兩個 SRS 圖像的代表性圖像。2.3 多儀器模式應用在大多數(shù) SRS 顯微鏡實驗中，由于激光器總帶寬的限制，光譜范圍被限制在大約 300 cm -1左右。繞過這一技術障礙的一種方法是使用可調(diào)諧激光器掃描波長。然而，波長調(diào)諧速度很慢，而且對于時間敏感的實驗（如活細胞成像）來說往往不夠。應對這一挑戰(zhàn)的另一種解決方案是引入第三束激光束來掃描不同的拉曼過渡區(qū)域。這種能力對于兩個光譜區(qū)域的同時成像特別有吸引力：一個在指紋區(qū)域（例如約1600 cm-1用于酰胺振動）和一個在CH區(qū)域（例如約2900 cm -1蛋白質(zhì)）。在 SRL 成像方法中，實驗裝置由一個斯托克斯光束和兩個不同波長的泵浦光束組成。此設置的常用檢測方法需要單獨的檢測器和單獨的 LIA。然而，Moku:Pro 的多儀器模式允許部署多個LIA，因此可以在不需要任何額外硬件妥協(xié)的情況下實施第二個LIA。圖 5：Moku:Pro 多儀器鎖相放大器配置圖 5 演示了LIA 的多儀器模式設置，用于同步 SRS 顯微鏡實驗。對于Slot 1，In 1是di一個光電二極管的檢測信號，In 2是參考信號，Out 1是發(fā)送到數(shù)據(jù)采集卡的信號，Out 3被丟棄。對于 Slot 2，In 3 是第二個光電二極管的檢測信號，In 2 再次作為參考，Out 2 是發(fā)送到數(shù)據(jù)采集卡的信號，Out 4 被丟棄。此配置僅使用 4 個 Moku 插槽中的 2 個。插槽 3 和 4 未分配，因此可用于進一步的 LIA 或任何其他 Moku 儀器。輸入全部配置為 AC：50 歐姆。每個 LIA 插槽（1 和 2）都遵循與單通道 LIA 配置相同的設置。在三個激光器的情況下，Moku:Pro 的多儀器模式可以配置兩個鎖定放大器，將系統(tǒng)簡化為一個設備，而不會有任何妥協(xié)。這使得研究人員可以同時拍攝兩張波數(shù)差較大的 SRS 圖像，利用一個 Moku:Pro 來處理兩個光電二極管檢測器信號。圖 6：HeLa 細胞 SRS 圖像使用多儀器設置在間隔較遠的拉曼躍遷處拍攝圖 6 是利用一個Moku:Pro處理兩個光電二極管檢測器信號同時拍攝兩個大波數(shù)差的 SRS 圖像的代表性圖像。三．結論 Moku:Pro 的 LIA 為大量 SRS 顯微鏡實驗提供了出色的解決方案。在本文檔中，討論了典型的單通道 SRS 成像、雙通道成像和多儀器成像。用戶界面允許對提取低強度 SRS 信號進行直觀和強大的控制。重要的是 Moku:Pro 的多儀器工具功能允許在多儀器同用的緊湊型系統(tǒng)上進行復雜的成像實驗。圖 7：Moku:Pro 在多樂器模式下的使用圖像。In 1 和 In 3 分別是插槽 1 和插槽 2 中 LIA 的信號輸入。2 中是兩個 LIA 插槽的參考。在所示的配置中，Out 1 和 Out 3 是記錄的信號，Out 2 和 Out 4 是插槽 1 和 2 的轉儲信號參考文獻：1.Freudiger CW, Min W, Saar BG, Lu S, Holtom GR, He C. et al. 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The Journal of Physical Chemistry Letters 2020, 11 (17), 7083-7089.更多詳情請聯(lián)系昊量光電/歡迎直接聯(lián)系昊量光電關于昊量光電：上海昊量光電設備有限公司是光電產(chǎn)品專業(yè)代理商，產(chǎn)品包括各類激光器、光電調(diào)制器、光學測量設備、光學元件等，涉及應用涵蓋了材料加工、光通訊、生物醫(yī)療、科學研究、國防、量子光學、生物顯微、物聯(lián)傳感、激光制造等；可為客戶提供完整的設備安裝，培訓，硬件開發(fā)，軟件開發(fā)，系統(tǒng)集成等服務。

2023-05-22 15:34:41未來以徠 AI賦能顯微技術 | 圖像分析軟件Aivia微頁面上線啦！

2023-03-07 22:09:15高通量單細胞力譜測定！多功能單細胞顯微操作技術助力單細胞力學研究: 單程細胞具有復雜生物學性質(zhì)，它們通過細胞外基質(zhì)ECM形成緊密的細胞與基質(zhì)細胞與細胞連接，諸如上皮細胞通過這種特殊的鏈接方式構成了屏障層保護人體免受外界損傷。因此細胞之間以及細胞基底的粘附力測定對于研究細胞粘附蛋白的機制有著重要意義。使用力學工具測量細胞間以及細胞與基質(zhì)之間的粘附力始終不是一件容易的事情。首先，由于細胞與基質(zhì)的作用力僅為nN級別，因此需要力學精度較高的設備才能夠測量，而且在這其中較為適合的工具為原子力顯微鏡（AFM）。原子力顯微鏡能夠提供納米級別的操作精度并可測量從pN~nN范圍的力譜。但是受制于AFM探針本身的限制，需要借助修飾手段才能夠讓細胞與探針固定到一起，這個過程十分繁瑣，并且由于需要大量手工操作很難實現(xiàn)高通量的測量。而不同的細胞由于細胞異質(zhì)性使得要想確定粘附力需要較多樣本才能獲得相對準確的值，無法實現(xiàn)高通量測量直接限制了原子力探針在細胞粘附力上的應用。而多功能單細胞顯微操作FluidFM技術的出現(xiàn)改變了這一現(xiàn)狀，它使用特殊的中空探針能夠輕松地通過負壓抓取細胞，取得和AFM近似精度的數(shù)據(jù)，無需在探針上進行任何修飾，不會改變細胞表面的任何通路，從而能夠得到接近細胞原生的數(shù)據(jù)。在實驗結束后能夠通過正壓快速丟棄用過的細胞，具備很高的自動化，能夠快速測量細胞粘附力。使用FluidFM對細胞操作的基本流程 FluidFM在粘附力測量上具備顯著優(yōu)勢。如圖所示，F(xiàn)luidFM能夠通過負壓將細胞吸附到原子力探針的末端，通過高精度位移臺的控制將細胞從基底上分離，并且同時記錄FD曲線。通過FD曲線能夠獲得最大粘附力Fmax和粘附能量Emax。通過高度自動化的控制系統(tǒng)能夠在短時間內(nèi)測量大量細胞粘附力，評估細胞群體分布以及細胞間差異，并且可有效避免傳統(tǒng)粘附力測量因準備時間過長而錯過最佳測量時間導致的細胞粘附力改變，得到更為精準的結果。近期，Agoston等人使用多功能單細胞顯微操作系統(tǒng)FluidFM實現(xiàn)了高通量細胞粘附力測量，對同種細胞不同區(qū)以及不同細胞之間的粘附力進行測量和比較。作者首先對Vero和Hela細胞在不同狀態(tài)下的粘附力進行了測量和比較，總共測量了214個細胞。通過比較明膠涂層上處于單個細胞、孤島狀細胞、致密連接細胞以及單層細胞上游離細胞之間的粘附力，能夠明顯觀測到Vero細胞處于致密連接的細胞粘附力最大，大概在750 nN左右，隨著細胞單細胞層的稀疏，細胞粘附力有所下降，而處于細胞層頂部的細胞粘附力最低僅為50 nN左右。這一點充分說明上皮細胞能夠在細胞之間形成緊密的連接，而處于細胞層外的細胞則幾乎沒有粘附力。而對于HeLa這樣的腫瘤細胞測量的結果卻顯示出了截然不同的結果，處于不同狀態(tài)的細胞有著近似的粘附力，基本都在200 nN左右，這與處于單個游離上皮細胞的粘附力十分接近，表明HeLa細胞在不同環(huán)境下仍然具有較高遷徙能力。使用FluidFM對不同區(qū)域細胞的FD曲線測定結果和對比通過對這兩種細胞的最大粘附力、最大粘附能量、最大拉伸距離和細胞接觸面積進行統(tǒng)計分析可以發(fā)現(xiàn)，HeLa腫瘤細胞在粘附力和粘附能量上均有所降低，但是當HeLa細胞形成了單層后，兩者區(qū)別不大。對比Hela和Vero在不同生長狀態(tài)下的最大粘附力、最大粘附能量、粘附拉伸距離和粘附面積。再進一步對Vero與HeLa細胞最大粘附力與距離和接觸面積進行對比，依然可以得到與單獨比較粘附力相同的結果，并且最大能量與細胞接觸面積的比值中也存在著類似的結果。由此可見腫瘤細胞通過降低自身粘附力從而獲得了更好的遷移能力。對不同狀態(tài)Vero和A549之間的粘附力/粘附距離、粘附力/粘附面積、粘附能量/粘附面積總結細胞粘附力測定在細胞生命科學研究中起著至關重要的作用，然而傳統(tǒng)手段中有著各種各樣的局限性，主要原因是缺乏一種有效抓取細胞并進行力學測定的手段。現(xiàn)如今FluidFM技術在細胞粘附力測定中的應用，使得研究者們有了一種能夠有效、低損的方式抓取細胞，配合原子力顯微鏡精確測量的特性，真正意義上做到精準、無損、快速的測量單細胞粘附力，幫助研究者尋找細胞粘附力與細胞生命發(fā)展、腫瘤細胞轉移之間的關系。【參考文獻】[1] A. Sancho, M. B. Taskin, L. Wistlich, P. Stahlhut, K. Wittmann, A. Rossi & J. Groll. Cell Adhesion Assessment Reveals a Higher Force per Contact Area on Fibrous Structures Compared to Flat Surfaces. ACS Biomater. Sci. Eng. 2022, 8, 2, 649–658.[2] P.W. Doll, K. Doll, A. Winkel, R. Thelen, R. Ahrens, M. Stiesch & A.E. Guber. Influence of the Available Surface Area and Cell Elasticity on Bacterial Adhesion Forces on Highly Ordered Silicon Nanopillars. ACS Omega. 2022, 7, 21, 17620–17631.[3] Sankaran, S. Jaatinen, L. Brinkmann, J. Zambelli, T. V?r?s, J. Jonkheijm, P. Cell adhesion on dynamic supramolecular surfaces probed by fluid force microscopy-based single-cell force spectroscopy. ACS Nano 2017, 11, 3867–3874.[4] Sancho, A. Vandersmissen, I. Craps, S. Luttun, A. Groll, J. A new strategy to measure intercellular adhesion forces in mature cell-cell contacts. Sci. Rep. 2017, 7, 46152.[5] Ines, Lüchtefeld. Alice, Bartolozzi. Julián M. M. Oana, Dobre. Michele, Basso. Tomaso, Zambelli. Massimo, Vassalli. Elasticity spectra as a tool to investigate actin cortex mechanics. J Nanobiotechnol. 2020, 18, 147.[6] Dehullu, J. Valotteau, C. Herman-Bausier, P. Garcia-Sherman, M. Mittelviefhaus, M. Vorholt, J. A. Lipke, P. N. Dufrene, Y. F. Fluidic force microscopy demonstrates that homophilic adhesion by Candida albicans Als proteins is mediated by amyloid bonds between cells. Nano Lett. 2019, 19, 3846–3853.[7] Mittelviefhaus, M. Müller, D. B. Zambelli, T. Vorholt, J. A. A modular atomic force microscopy approach reveals a large range of hydrophobic adhesion forces among bacterial members of the leaf microbiota. ISME J. 2019, 13, 1878–1882.[8] F. Weigl, C. Blum, A. Sancho & J. Groll. Correlative Analysis of Intra- versus Extracellular Cell Detachment Events vis the Alignment of Optical Imaging and Detachment Force Quantification. Adv. Mater. Technol. 2022, 2200195.【相關產(chǎn)品】　　多功能單細胞顯微操作系統(tǒng)- FluidFM OMNIUM:http://m.sdczts.cn/zt2203/product_386418.html