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如何用流式檢測小鼠外周血中T細胞的凋亡

rancho76 2016-12-25 06:21:28 574  瀏覽
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  • 嘆雪落無聲 2016-12-26 00:00:00
    中性粒細胞(PMN)是機體防御系統(tǒng)的主要組成部分,能吞噬和殺滅多種致病原。致病原與血清中的特異性抗體(IgG)結(jié)合后,通過IgG的Fc部分與PMN表面的受體——FcγRⅢ(CD16b)相結(jié)合,從而被吞噬。FcγRⅢ有a、b兩種類型,F(xiàn)cγRⅢa(CD16a)是一種跨膜糖蛋白,PMN表面的FcγRⅢb(CD16b)是一種糖肌醇磷脂蛋白(GPI-錨蛋白)[1]。近年發(fā)現(xiàn)陣發(fā)性睡眠性血紅蛋白尿癥(PNH)患者在血細胞表面缺失各種特異的GPI-錨蛋白,CD16b正是這類蛋白之一。為探討PMN表面CD16b的缺失與PMN釋放氧自由基殺菌功能的關(guān)系,將我們的研究報告如下。 材料和方法 1 標本采集 正常人外周血取自協(xié)和醫(yī)院血庫正常獻血者,正常取自協(xié)和醫(yī)院胸外科手術(shù)患者的肋骨,PNH患者按1987年全國溶血性貧血會議擬定的診斷標準,并經(jīng)流式細胞儀免疫熒光法檢測CD59標記率進一步確診。 2 中性粒細胞的分離  新鮮的外周血或,用肝素抗凝,經(jīng)淋巴細胞分離液分離,去除淋巴細胞和單個核細胞,用右旋糖酐(dextran,分子量=7~11 萬) 沉降和低滲法去除紅細胞,得到純凈的中性粒細胞。用臺盼藍染色法檢查細胞活力,須保證細胞存活率大于95%。 3 間接免疫熒光法檢測CD16 取1×106個細胞,懸浮于100μl 2% BSA中,室溫封閉30分鐘,加 CD16單克隆抗體(Immunotech SA公司產(chǎn)品),在室溫作用30分鐘后,用PBS洗滌2次,再懸浮于100μl 2%BSA中,加FITC 標記的羊抗鼠IgG(Gibco公司產(chǎn)品)室溫暗染20分鐘后洗去二抗。用500μl PBS懸浮細胞,用流式細胞儀檢測CD16 標記率。 4 中性粒細胞功能測定  佛波醇酯(PMA,Sigma產(chǎn)品,用DMSO溶解,配制成1mg/ml,儲存于-20℃,臨用前稀釋)能激活中性粒細胞,使之釋放活性氧,其中O-2*和H2O2能與化學發(fā)光劑Luminol(3-氨基苯二甲酰肼,北京化工廠)反應(yīng)而發(fā)光。用LKB-1250發(fā)光儀(Luminometer)檢測。正常人和PNH患者中性粒細胞,制備成細胞懸液(107 /ml)與 100nmol/L PMA 反應(yīng),37℃15分鐘,置于冰上終止反應(yīng),取含1×105 細胞的激活液加入到1ml 0.1nmol/L 的Luminol 溶液中,立即測定發(fā)光值,每一數(shù)值測定3次以上, 取平均值。取正常人的不同細胞數(shù),測定發(fā)光值,結(jié)果顯示發(fā)光值與細胞數(shù)有良好的線性關(guān)系,說明此方法具有可靠性 (附圖)。 附圖 細胞數(shù)與發(fā)光值的線性關(guān)系 5 細胞培養(yǎng) 以 1×106個細胞/ml的密度接種PMN于IMDM培養(yǎng)基(含10%自身血清),37℃、5% CO2分別培養(yǎng)12,16,20小時。 6 細胞形態(tài)學觀察 不同培養(yǎng)時間的細胞用瑞氏染色,光學顯微鏡下觀察。 7 DNA含量分析 取細胞1×106,PBS洗2遍,以70%冷乙醇(4℃)固定12小時以上,用PBS洗去乙醇,加入0.5ml檸檬酸-磷酸緩沖液(pH 7.8)室溫作用5分鐘,離心后以PBS重懸細胞,加入 RNaseA (終濃度60μg/ml)37℃作用30分鐘,再加入碘化乙錠(PI,終濃度50μg/ml)4℃暗染30分鐘,以染細胞內(nèi)總DNA,用流式細胞儀分析正常細胞和凋亡細胞,計算凋亡率。 結(jié)  果 1 形態(tài)學觀察 新鮮外周血分離出的中性粒細胞有典型的分葉核,經(jīng)培養(yǎng)后,形態(tài)出現(xiàn)一系列凋亡細胞特性的形態(tài)學改變。培養(yǎng)12小時,細胞體積變小,胞漿濃縮,核濃縮;培養(yǎng)16小時以后,部分細胞聚集成團,細胞核碎裂成小塊,胞漿中出現(xiàn)空泡,凋亡小體形成。培養(yǎng)時間越長,光鏡下可見的凋亡細胞比率越高。 2 中性粒細胞培養(yǎng)過程中CD16的標記率隨時間的延長逐漸降低,而凋亡率逐漸增加,中性粒細胞的功能則呈明顯的下降趨勢,結(jié)果見表1。 表1 體外培養(yǎng)不同時間的正常外周血中性粒細胞的幾項指標比較 培養(yǎng)時間 (小時) CD16標率 (%) 流式儀檢測 凋亡率(%) 發(fā)光頻率 (次/分) 0 99.5 1.2 124.32 12 64.4 29.5 67.27 16 30.0 39.4 45.43 20 18.1 64.0 30.18 3 PNH患者的PMN釋放超氧功能與正常人相比有顯著的差異,結(jié)果見表2。 表2 PNH患者與正常中性粒細胞幾項指標的比較 組別 例 數(shù) CD59標記率 (%) CD16標記率 (%) 發(fā)光頻率 (次/分) 正常組 10 >95.00 >95.00 117.16±11.47 PNH組 5 13.60±4.26 2.44±0.98 44.82±16.52 P值   <0.001 < 0.001 < 0.001 討   論   Ravetch等[1]報告CD16有變異型分布在不同細胞。CD16a分布在巨噬細胞和NK細胞表面,是跨膜蛋白;CD16b僅存于PMN,是GPI錨蛋白。我們應(yīng)用CD16單抗檢測CD16b在PMN表面的量。   PMN的殺菌功能涉及許多方面,有氧化型和非氧化型因素。本實驗用不依賴于Fc受體的激活劑PMA來激活PMN,應(yīng)用發(fā)光法測定氧自由基,包括O-2*、H2O2及OH-,測定時,加入PMN激活液即刻連續(xù)記錄1分鐘,以發(fā)光Z高值計算,代表PMN受刺激后的即刻反應(yīng),反映釋放氧自由基的能力,氧化型殺菌的功能。   PNH是造血干細胞PIG-A基因突變引起的克隆病,不同患者的異常血細胞GPI-錨蛋白缺失情況有很大差異,Schubert等[2]報道,PNH患者CD16缺失較CD59更明顯,我們也觀察到這個現(xiàn)象(結(jié)果見表2),而且發(fā)現(xiàn)中PMN CD16b陰性細胞比外周血多,因此選擇了PNH患者的PMN作為研究對象,并且我們所選擇的都是病情較嚴重,病態(tài)細胞率高的病例(以CD59的標記率為標準),因此結(jié)果更具有可靠性。   從以上結(jié)果得知CD16b表達量低的PNH患者,PMN釋放氧的能力亦低,兩者有平行的關(guān)系。為了進一步證實它們的相關(guān)性,應(yīng)用正常人PMN在體外培養(yǎng),也獲得同樣的結(jié)果。在培養(yǎng)過程中CD16b逐漸減少,釋放氧自由基的功能也降低,兩者有相伴關(guān)系。Hunizinga等[3]也曾發(fā)現(xiàn)在PMN激活的同時有CD16b的丟失。   根據(jù)Dransfield等[4]的報道,隨CD16b表達量的下降,PMN逐漸凋亡。所以在PMN體外培養(yǎng)的同時又觀察了其凋亡的情況。從形態(tài)及DNA含量變化,證實在CD16b表達量降低,釋放氧自由基功能降低的同時,細胞出現(xiàn)凋亡,凋亡程度與其兩項指標降低程度同步。   總之,正常人PMN在凋亡過程中CD16b減少的同時,釋放氧自由基的功能也降低;PNH患者CD16b減少,釋放氧自由基也減少,至于兩者之間有何內(nèi)在關(guān)聯(lián),有待進一步研究。但至少從另一個側(cè)面說明PNH患者PMN表面CD16b缺失,使受體介導(dǎo)的特異性識別吞噬病原菌的功能下降;釋放活性氧減少以致氧化殺菌功能降低,這兩方面可能是PNH患者易受感染的原因。 參 考 文 獻 1 Ravetch,JV,Perussia B.Alternative membrane forms of FcγRⅢ (CD16)on human natural killer cells and neutrophils.J Exp Med,1989,170:481-497. 2 Schubert J,Alvarado M,Ucicechowski P,et al.Diagnosis of PNH using immunophenotyping of peripheral blood cells.Br J Haematol,1991,79:487-492. 3 Hunizinga TWJ, van der Schoot CE,Jost C,et al.The PI-linked FcγRⅢ is released on stimulation of neutrophils.Nature,1988,333:667-669. 4 Dransfield I,Buckle AM,Savill JS,et al.Neutrophil apoptosis is associated with a reduction in CD16(FcγRⅢ) expression.J Immunol,1994,152:1254-1263

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