根據(jù)NCBI的ClinVar數(shù)據(jù)庫統(tǒng)計，包括罕見疾病，如鐮狀細(xì)胞病、地中海貧血和先天性萊伯黑朦等超過3萬7千種已知疾病與致病性單核苷酸變異（SNV）有關(guān)，SNV可能導(dǎo)致原始DNA序列、轉(zhuǎn)錄水平和蛋白質(zhì)序列等其他特性的變化。而新一代CRISPR/Cas9技術(shù)——堿基編輯器（BEs）可以有效地修復(fù)堿基突變，而不會誘導(dǎo)雙鏈DNA斷裂，從而能夠直接、不可逆地校正堿基突變，對于治愈SNV引起的遺傳疾病具有十分廣闊的前景。已經(jīng)報道的有誘導(dǎo)C·G到T·A轉(zhuǎn)化的胞嘧啶堿基編輯器（CBE）、誘導(dǎo)A·T到G·C轉(zhuǎn)化的腺嘌呤堿基編輯器（ABE）和使C·G到G·C轉(zhuǎn)換的糖基化酶堿基編輯器（GBE），這些BEs為治 療50%以上致病性SNV提供了幾乎理想的解決方案。

然而，在實施基于BE的基因療法之前，有必要大量構(gòu)建具有致病性SNV的細(xì)胞疾病模型，以用于開發(fā)和優(yōu)化BEs，并使其在基因治 療中的應(yīng)用成為可能。同時，根據(jù)ClinVar的數(shù)據(jù)，大約50%的人類致病性SNV是C·G到T·A的轉(zhuǎn)化，然而目前很難通過合理的人力和資金投入獲得大量攜帶這些SNV的細(xì)胞模型。這一方面是由于大規(guī)模樣品，手動操作不僅耗時，而且容易出錯，一致性較差且成本高昂；另外一方面，現(xiàn)有的基于目標(biāo)-位點集成庫的方法，如Be-Hive等在為AI學(xué)習(xí)和預(yù)測編輯性能的數(shù)據(jù)時，缺乏原位信息的綜合編輯位點數(shù)據(jù)，同時又缺少真實染色體環(huán)境（先前研究表明，核酸酶的性能與染色質(zhì)可及性之間存在很強(qiáng)的相關(guān)性，并且基因編輯在真核染色質(zhì)中比異染色質(zhì)中更有效）。

中科院天津工業(yè)生物技術(shù)研究所和天津科技大學(xué)的團(tuán)隊，開發(fā)了一個由以下四個模塊組成的用于哺乳動物細(xì)胞高通量原位基因編輯的自動化平臺，實現(xiàn)了哺乳動物細(xì)胞基因編輯的標(biāo)準(zhǔn)化和可拓展性。

（1）內(nèi)源性靶g(shù)RNA計算機(jī)輔助設(shè)計；

（2）gRNA表達(dá)質(zhì)粒構(gòu)建；

（3）哺乳動物細(xì)胞堿基編輯；

（4）CBEs性能模型構(gòu)建的機(jī)器學(xué)習(xí)。

四個模塊組成的用于哺乳動物細(xì)胞高通量原位基因編輯的自動化平臺，實現(xiàn)了哺乳動物細(xì)胞基因編輯的標(biāo)準(zhǔn)化和可拓展性。該平臺借助大規(guī)模的原位編輯數(shù)據(jù)和序列信息，結(jié)合局部染色質(zhì)可及性，具有原位數(shù)據(jù)的機(jī)器學(xué)習(xí)模型能夠更好地預(yù)測實際的堿基編輯效率，使獲得內(nèi)生目標(biāo)的大規(guī)模編輯數(shù)據(jù)集成為可能。

圖1 全自動高通量哺乳動物基因編輯平臺概覽

在這四個模塊中，第 一個模塊用于負(fù)責(zé)gRNA設(shè)計，以將人類致病性SNV引入野生型細(xì)胞，作者使用生物信息學(xué)分析選擇了1210個基因作為靶位點，使用包含每個靶位點上游3 bp至下游750 bp靶區(qū)的DNA序列，分批處理用于分析編輯結(jié)果的三對引物。對于自動化gRNA質(zhì)粒構(gòu)建工作流程模塊，gRNAs質(zhì)粒構(gòu)建過程中采用了貝克曼庫爾特Echo納升級聲波移液系統(tǒng)用于操縱DNA組裝反應(yīng)，相對于標(biāo)準(zhǔn)的Golden Gate DNA組裝方法的反應(yīng)體積為15μl，Echo的納升級和無吸頭操作能夠?qū)嶒灢襟E進(jìn)行一系列優(yōu)化，將反應(yīng)系統(tǒng)最小化到1微升的總體積，從而顯著降低了實驗成本。

隨后使用貝克曼庫爾特Biomek i7自動化移液工作站將DH5α感受態(tài)細(xì)胞與Golden Gate產(chǎn)物進(jìn)行混合，通過ClonePix進(jìn)行轉(zhuǎn)化鋪板，并在通過DNA測序驗證構(gòu)建質(zhì)粒之后，使用Biomek i7進(jìn)行質(zhì)粒提取。為了分析數(shù)據(jù)編輯結(jié)果，使用Python腳本讀取sanger測序文件，比較N20，并創(chuàng)建兩個參考csv文件。錯誤的組裝csv文件包括一個選擇列表，用于從48孔細(xì)菌菌落板到96孔深孔板中挑選新菌落，以便ClonePix進(jìn)行另一輪驗證。正確組裝csv文件包含N20測序及其在96孔深孔板中的位置，用于使用貝克曼庫爾特Biomek i7自動化移液工作站進(jìn)行質(zhì)粒提取。此模塊高通量自動化系統(tǒng)在4天之內(nèi)共構(gòu)建和分析了1210個gRNA質(zhì)粒，成功率達(dá)99%，實現(xiàn)了每天384個gRNA組裝的通量。而后續(xù)使用Biomek i7進(jìn)行的質(zhì)粒提取，通量則可達(dá)到576個質(zhì)粒/天。

圖2 全自動gRNA質(zhì)粒構(gòu)建工作流程概述示意圖

第三個模塊是哺乳動物細(xì)胞中的堿基編輯，如圖3。通過優(yōu)化實驗條件，作者開發(fā)了使用Biomek i7自動化移液工作站進(jìn)行包括細(xì)胞接種和轉(zhuǎn)染、細(xì)胞培養(yǎng)基更換以及進(jìn)行樣品收集在內(nèi)的編輯過程。隨后進(jìn)行靶區(qū)域的細(xì)胞裂解和PCR擴(kuò)增。全自動高通量系統(tǒng)在6h內(nèi)將1210組gRNA和BE4max質(zhì)粒共轉(zhuǎn)染到HEK293T細(xì)胞中，并在2 h內(nèi)完成后續(xù)培養(yǎng)基更換。培養(yǎng)5天后，收獲編輯的細(xì)胞于8小時內(nèi)完成進(jìn)行PCR分析，然后進(jìn)行sanger測序。使用Python腳本產(chǎn)生3個csv文件，一個用于準(zhǔn)備新一輪PCR的挑選列表，以分析使用Biomek i7從96孔裂解樣品板到96孔PCR板的false sample；第二個csv文件包含用于分析false sample的第二個引物對的序列和位置信息，用于新一輪PCR；第三個csv文件包含正確的樣本和編輯效率結(jié)果，用于下一步的AI學(xué)習(xí)。

圖3 自動化基因編輯過程的工作流程概述

第四個模塊為作者開發(fā)的AI模型——染色質(zhì)可及性學(xué)習(xí)模型（CAELM），預(yù)測基礎(chǔ)編輯的結(jié)果。CAELM基于自動化平臺生成的高度均勻的原位基因組編輯數(shù)據(jù)，預(yù)測HEK4T細(xì)胞中的BE293max行為，并實現(xiàn)了0.64的皮爾遜相關(guān)值。皮爾遜r是評估數(shù)值數(shù)據(jù)模型準(zhǔn)確性的最普遍指標(biāo)之一，CAELM模型中考慮了目標(biāo)序列的真實染色體環(huán)境，這提供了更好、更現(xiàn)實的預(yù)測；同時，CAELM還提供了模型輸入的特征重要性得分，并揭示了DNA可及性相對于目標(biāo)序列上下文的貢獻(xiàn)在預(yù)測中接近1:6。

通過與32個不同基因組位點的手動操作進(jìn)行比較，其中16個目標(biāo)位點在兩個操作過程中的編輯效率幾乎相等，而自動化高通量系統(tǒng)在其他14個位點的統(tǒng)計分析中表現(xiàn)出更高的編輯效率。這些結(jié)果表明，自動化高通量系統(tǒng)能夠以與手動操作相當(dāng)?shù)男蕡?zhí)行基礎(chǔ)編輯；隨機(jī)選擇BE4max編輯靶標(biāo)的1210個與疾病相關(guān)的SNV的編輯效率均達(dá)到了較高水平，說明可以同時有效地操縱數(shù)千個內(nèi)源性靶位點的人類細(xì)胞的全自動高通量原位基因編輯平臺的成功建立。

細(xì)胞離心是常見細(xì)胞實驗中不可缺少的一步，它不僅可以使掛壁的樣品完全沉降到管底，也可以幫助確認(rèn)細(xì)胞濃度，用于后續(xù)的如原代細(xì)胞培養(yǎng)、細(xì)胞傳代培養(yǎng)、單細(xì)胞測序等相關(guān)實驗。

對于不同的細(xì)胞/細(xì)胞器分離，其離心分離法各不相同，適合的場合也不盡相同。那么常見的細(xì)胞離心分離方法都有哪些呢？

01差速離心法

差速離心法是利用在離心力場中不同的粒子沉降系數(shù)的差別，通過逐漸提高離心力，使非均勻混合液內(nèi)的不同大小、形狀的粒子分步沉淀的離心方法。主要用于實驗室樣品分離，例如分離細(xì)胞器線粒體、葉綠體、蛋白質(zhì)和病毒等。

 分離步驟 第/一步：設(shè)置較低的離心速度（相對離心力），先讓較大的顆粒沉降到管底，而混合液中小的顆粒仍然懸浮在上清液中。

第二步：收集沉淀，設(shè)置較高的離心速度（相對離心力）離心懸浮液，將較小的顆粒沉降，后續(xù)依此類推，最終可分離不同大小顆粒的。

圖一.差速離心示意圖

 02密度梯度離心法

密度梯度離心法又稱為區(qū)帶離心法，可分為速率區(qū)帶離心法和等密度離心法。

 1.速率區(qū)帶離心法 

主要用于分離密度相近而大小不等的細(xì)胞或細(xì)胞器。離心管內(nèi)先裝入蔗糖、甘油、CsCl、Percoll等密度梯度介質(zhì)，樣品粒子的密度必須大于梯度液柱中任一點的密度，被分離的粒子在梯度液中沉降速度不同，離心時，混合樣品中不同的組分將在梯度液柱的不同位置分別形成各自的區(qū)帶，達(dá)到彼此分離的目的。

圖二.速率區(qū)帶離心示意圖

 2.等密度離心法 

適用于分離密度不等的顆粒。細(xì)胞或細(xì)胞器在連續(xù)梯度的介質(zhì)中經(jīng)足夠大離心力和足夠長時間則沉降或漂浮到與自身密度相等的介質(zhì)處，并停留在那里達(dá)到平衡，從而將不同密度的細(xì)胞或細(xì)胞器分離。常用介質(zhì)有Percoll，而CsCl、Cs2SO4和三碘甲酰葡萄糖胺經(jīng)長時間離心后也可產(chǎn)生穩(wěn)定的梯度。

圖三.密度梯度離心示意圖

瑞沃德M1416R高速臺式冷凍離心機(jī)

瑞沃德M1416R高速臺式冷凍離心機(jī)，不僅可以應(yīng)用在細(xì)胞的密度梯度離心，還可應(yīng)用在細(xì)胞沉淀，細(xì)胞的懸浮純化；病毒的沉淀及PEG沉淀，病毒的密度梯度離心；蛋白質(zhì)、核酸分離；生物制品、化學(xué)高分子制品、納米材料純化處理；臨床的血液、體液、排泄物等的分離。應(yīng)用廣泛，性能卓越。

• 轉(zhuǎn)速可達(dá)30，000 X g，在較高轉(zhuǎn)速也可使樣品穩(wěn)定離心

• 9/10升降速可調(diào)節(jié)，有利于密度梯度離心

• 多種轉(zhuǎn)子可選，可實現(xiàn)單管2mL-400mL的離心需求

• 自鎖轉(zhuǎn)子搭配快鎖蓋子，實現(xiàn)高效轉(zhuǎn)自切換及離心

• 搭配動平衡實時監(jiān)測系統(tǒng)，保證樣本安全

  
  

  
  

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腫瘤疫苗背景

腫瘤疫苗，是一種具有預(yù)防和治 療潛力的有吸引力的替代免疫治 療選擇，是近年研究的熱點之一。針對腫瘤相關(guān)抗原（Tumor-associated antigen,TAA）或腫瘤特異性抗原 (Tumor specific antigen,TSA) 的疫苗可以特異性地攻擊和破壞抗原過表達(dá)的惡性細(xì)胞，并由于免疫記憶而實現(xiàn)慢性治 療反應(yīng)。因此，與其他免疫療法相比，癌癥疫苗提供了特異性、安全性和可耐受的治 療。

根據(jù)腫瘤抗原的組分，癌癥疫苗大致可以分為四種類型：基于 DNA 的疫苗，基于 RNA 的疫苗，基于多肽的疫苗和基于免疫細(xì)胞的疫苗。FDA 批準(zhǔn)的首 個個性化腫瘤疫苗 PROVENGE (Sipuleucel-T) 是一種基于免疫細(xì)胞的疫苗，用于激素難治性前列腺癌的治 療。除此之外，Moderna，BioNTech 都在布局基于 mRNA 的腫瘤疫苗。

圖 1 腫瘤疫苗抗原呈遞平臺示意圖

腫瘤疫苗有效性評估方法

生物體接種疫苗后，腫瘤抗原被帶到淋巴結(jié)，進(jìn)而激活抗原特異性的 B 細(xì)胞和 T 細(xì)胞，活化的 B 細(xì)胞產(chǎn)生的抗體及活化的效應(yīng) T 細(xì)胞會使腫瘤內(nèi)脹并誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞死亡。

圖 2 腫瘤疫苗誘導(dǎo)的免疫反應(yīng)示意圖

如何有效的評估腫瘤疫苗的有效性是一個非常值得探討的問題，常用的腫瘤疫苗有效性驗證的方法，包括細(xì)胞因子檢測、CTL 活性檢測、T 細(xì)胞活化標(biāo)志物檢測、抗體滴度檢測、ADCC 檢測等。

1、細(xì)胞因子檢測

細(xì)胞因子是由免疫細(xì)胞經(jīng)過刺激而合成并分泌的小分子蛋白質(zhì)，在免疫應(yīng)答中起著非常重要的作用，因此可以通過細(xì)胞因子的分泌能力來反應(yīng)疫苗誘導(dǎo)的細(xì)胞免疫的水平。常見的細(xì)胞因子有白介素 (IL) 、干擾素 (IFN)、 腫瘤壞死因子 (TNF) 等。下面比較了幾種常見的檢測方法。

ELISA 是一種非常經(jīng)典的細(xì)胞因子的檢測方法，例如在王曉東等人發(fā)表的關(guān)于胃癌疫苗研究的文章中，提到了用 ELISA 的方法檢測接種疫苗后小鼠骨 髓源樹突狀細(xì)胞（BMDCs）分泌細(xì)胞因子的能力，檢測方法如下：

BMDCs 在含有 10ng/mL GM-CSF 和 10ng/mL IL-4 的 X-vivo 15 培養(yǎng)基中培養(yǎng)，37℃下培養(yǎng) 6 天，然后以每孔 5×104 細(xì)胞的密度在 96 孔板中接種。以 5μM 或 10μM 的最 終濃度加入疫苗抗原，孵育 24 小時。使用小鼠 TNF-α 和 IL-12 p70 ELISA Ready-SET-Go 試劑組定量培養(yǎng)上清中的 TNF-α 和 IL-12 。首先在 4℃下用捕獲抗體包被 ELISA 板過夜，然后在室溫下依次加入阻斷液、細(xì)胞培養(yǎng)上清和檢測抗體，孵育 1h 。 最 后加入終止液和顯色劑，用酶標(biāo)儀 (BioTek) 在 450nm 處記錄 OD 值。

檢測結(jié)果如下：

從檢測結(jié)果可以看出，T7（TLR7 激動劑）的存在可以顯著提升 ML/MB 抗原誘導(dǎo)的免疫反應(yīng)。

圖 3 ELISA 法測定小鼠骨 髓樹突狀細(xì)胞 (BMDCs) 分泌

TNF-α (a) 和 IL-12 (b) 的水平

Ankita Leekha 等人發(fā)表的關(guān)于 SRAS-COV2 疫苗文章中，提到了用 ELISPOT 的方法評估細(xì)胞因子的分泌水平，可以作為參考。具體方法如下：

從小鼠中分離脾細(xì)胞和肺細(xì)胞，使用小鼠 IFNγ ELISpot 基礎(chǔ)試劑盒和小鼠 IL4 ELISpot 基礎(chǔ)試劑盒 (Mabtech, VA, USA) 進(jìn)行 IFNγ 和 IL4 ELISpot 檢測。在 37℃ 下，在預(yù)包被抗體的 ELISpot 板中，用抗原刺激脾細(xì)胞和肺細(xì)胞，培養(yǎng) 16-18 小時。第二天，洗掉細(xì)胞，加入生物素化的檢測抗體。洗板后，加入 1:30000 稀釋的 Extravidi-ALP 偶聯(lián)物，室溫孵育 1 小時。洗板后，每孔添加 70μL 顯色液，孵育 20-30min，形成斑點，然后用水清洗，干燥。使用 Cytation 7 (BioTek) 對斑點進(jìn)行量化。每個點對應(yīng)一個單獨的細(xì)胞因子分泌細(xì)胞。

檢測結(jié)果如下：

圖 4 ELIPSOT 方法檢測小鼠脾細(xì)胞

和肺細(xì)胞分泌細(xì)胞因子的水平

2、CTL 活性檢測

疫苗誘導(dǎo)的細(xì)胞毒性 T 淋巴細(xì)胞 (CTL) 可以直接殺傷腫瘤細(xì)胞，起到抗腫瘤的作用，因此可以通過檢測 CTL 的殺傷效應(yīng)來反應(yīng)疫苗的效果。常用的檢測細(xì)殺傷效應(yīng)的方法有很多，下表列舉了一些常用的方法。

王曉東等人發(fā)表的文章中提到了 LDH 檢測，檢測方法如下：

從接種疫苗小鼠的脾 臟中分離淋巴細(xì)胞（效應(yīng)細(xì)胞）。EAC 腫瘤細(xì)胞（靶細(xì)胞）與淋巴細(xì)胞（效應(yīng)細(xì)胞-靶細(xì)胞比例為 50:1）共培養(yǎng) 4h，使用乳酸脫氫 (LDH) 法測定細(xì)胞毒性。將培養(yǎng) 4h 后的培養(yǎng)上清加入在 ELISA 板中，室溫下加入底物溶液，孵育 30min。最 后，加入終止液終止反應(yīng)，并用酶標(biāo)儀 (BioTek) 在 490nm 處檢測光密度。

檢測結(jié)果如下：

相對于 PBS 對照組來說，T7-MB 組 CTL 細(xì)胞具有顯著的殺傷效應(yīng)。

圖 5 LDH 法測定 CTL 介導(dǎo)的 EAC 靶細(xì)胞的裂解水平

3、抗體滴度及親和力檢測

腫瘤疫苗除了可以誘導(dǎo)細(xì)胞免疫之外，也可誘導(dǎo)體液免疫，對此可通過對抗體滴度及親和力進(jìn)行檢測來反應(yīng)疫苗抗腫瘤的效果，ELISA 是一種非常經(jīng)典的檢測方法。

上述關(guān)于胃癌疫苗的文章中通過 ELISA 方法測定小鼠接種疫苗后血清中總 IgG 含量，具體檢測過程如下：

小鼠接種疫苗后收集血液樣本，通過 3000g 離心 15 分鐘獲得血清樣本。ELISA 板預(yù)先在 4℃ 包被 BSA-MG1 過夜，然后在室溫下依次加載封閉溶液 2h，血清樣品 (1:50 稀釋) 和檢測抗體 1h。最 后，在體系中加入 p-NPP 底物 (Millipore) 和終止液，用酶標(biāo)儀 (BioTek) 在 405nm 處記錄 OD 值。

檢測結(jié)果如下：

相對于 PBS 對照組來說，T7-MB 組抗體含量明顯上升。

圖6 ELISA法測定疫苗誘導(dǎo)的血清抗體水平

除此之外，在 Emily C. Gale 等人發(fā)表的關(guān)于 mRNA 遞送系統(tǒng)及輔劑研究的文章中，通過 ELISA 的方法測定了 mRNA OVA 模式疫苗誘導(dǎo)的 OVA 特異性抗體的絕 對含量及其親和力。具體檢測方法如下：

抗體濃度：小鼠接種加強(qiáng)疫苗后，采集血液樣品，血清按照 1:100 000 進(jìn)行稀釋。采用 anti-OVA mouse IgG1 ELISA (Cayman Chemicals) 試劑，按照試劑廠家的說明進(jìn)行 ELISA 實驗。使用 Synergy H1 Microplate Reader (BioTek) 在 450nm 處記錄 OD 值。根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計算血清抗體濃度，表示 mg/mL。

抗體親和性：將 12 個梯度稀釋的血清與恒定濃度標(biāo)記 HRP 的 anti-OVA 抗體 (3nM) 混合，并在 OVA 抗原包被的板中室溫孵育 2 小時，洗板后用 TMB 底物孵育，用 HCl 停止反應(yīng)。測定 450nm 處的 OD 值。根據(jù)業(yè)內(nèi)發(fā)現(xiàn)的單克隆抗體的共同親和力，假設(shè)對照抗體的 KD 為 1nM 對實驗組的 KD 值進(jìn)行統(tǒng)計。這一假設(shè)僅影響報告的絕 對 KD 值，而不影響實驗組之間的相對差異。

檢測結(jié)果如下：

pIC 為雙鏈 RNA 結(jié)構(gòu)模擬物，圖E中比較了可溶性的 pIC 和不同納米顆粒遞送系統(tǒng)誘導(dǎo)的絕 對抗體含量，從圖 E 中可以看出 2B 遞送系統(tǒng)誘導(dǎo)的 OVA 特異性抗體含量最 高。從F和G可以看出 2B 遞送系統(tǒng)相對于可溶性 pIC 來說誘導(dǎo)的 IgG 親和力也顯著升高。

圖 7 pIC/PBAE NPs 增強(qiáng)體液免疫

4、ADCC 檢測

疫苗誘導(dǎo)體液免疫產(chǎn)生的抗體能夠捕捉目標(biāo)抗原，阻斷這個靶分子的功能，也可以引導(dǎo)其他免疫細(xì)胞（如巨噬細(xì)胞和自然殺傷細(xì)胞）殺死表達(dá)抗原的靶細(xì)胞，在腫瘤治 療中，特別是血液腫瘤中，抗體依賴的細(xì)胞介導(dǎo)的細(xì)胞毒性作用 (ADCC) 起著關(guān)鍵作用，ADCC 常用的檢測方法包括細(xì)胞活力檢測、LDH 檢測、工程細(xì)胞株、Delfia、RTCA、細(xì)胞成像檢測等。

王曉東等人發(fā)表的關(guān)于胃癌疫苗研究的文章中，提到了 LDH 方法檢測 ADCC，檢測方法如下：

小鼠接種疫苗后，采集其血清樣本（1:25 稀釋），然后與 EAC 細(xì)胞（靶細(xì)胞）在 37°C 孵育 30min。使用小鼠 NK 細(xì)胞分離試劑盒從正常 BALB/c 小鼠中分離出自然殺傷 (NK) 細(xì)胞（效應(yīng)細(xì)胞），與抗體標(biāo)記的 EAC 細(xì)胞以效靶比 50:1 共培養(yǎng) 4 小時。采用 LDH 法 (Promega) 測定細(xì)胞毒性，檢測方法與之前提到的 CTL 活性檢測的方法一致。

檢測結(jié)果如下：

相對于 PBS 對照組來說，T7-MB 組產(chǎn)生的抗體具有顯著的殺傷效應(yīng)。

圖 8 LDH 法測定血清抗體介導(dǎo)的 EAC 靶細(xì)胞的裂解水平

腫瘤疫苗生物學(xué)活性檢測解決方案推薦

本文介紹了腫瘤疫苗活性檢測的常用方法，包括細(xì)胞因子檢測、CTL 活性檢測、抗體滴度及親和力檢測、ADCC 檢測等方法，涉及到了酶標(biāo)儀、成像系統(tǒng)、流式、RTCA、洗板分液系統(tǒng)等設(shè)備。Agilent 細(xì)胞分析事業(yè)部可以從多個角度為用戶提供從樣品處理，到結(jié)果檢測再到數(shù)據(jù)分析的全面解決方案。