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GB5449-85煙煤羅加指數(shù)測定方法
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本文由 鶴壁市民生科技開發(fā)有限責(zé)任公司 整理匯編
2012-09-09 00:00 788閱讀次數(shù)
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GB5449-85煙煤羅加指數(shù)測定方法
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缺點(diǎn):由于MTT經(jīng)還原所產(chǎn)生的甲產(chǎn)物不溶于水,需被溶解后才能檢測。這不僅使工作量增加,也會(huì)對實(shí)驗(yàn)結(jié)果的準(zhǔn)確性產(chǎn)生影響,而且溶解甲的有機(jī)溶劑對實(shí)驗(yàn)者也有損害。MTT溶液的配制方法通常,此法中的MTT濃度為5mg/ml。因此,可以稱取MTT0.5克,溶于100ml的磷酸緩沖液(PBS)或無酚紅的培養(yǎng)基中,用0.22μm濾膜過濾以除去溶液里的細(xì)菌,放4℃避光保存即可。在配制和保存的過程中,容器**用鋁箔紙包住。實(shí)驗(yàn)的時(shí)候我一般關(guān)閉超凈臺(tái)上的日光燈來避光,覺得這樣比較好。需要注意的是,MTT法只能用來檢測細(xì)胞相對數(shù)和相對活力,但不能測定細(xì)胞數(shù)。在用酶標(biāo)儀檢測結(jié)果的時(shí)候,為了保證實(shí)驗(yàn)結(jié)果的線性,MTT吸光度**在0-0.7范圍內(nèi)。MTT一般**現(xiàn)用現(xiàn)配,過濾后4℃避光保存兩周內(nèi)有效,或配制成5mg/ml保存在-20度長期保存,避免反復(fù)凍融,**小劑量分裝,用避光袋或是黑紙、錫箔紙包住避光以免分解。我一般都把MTT粉分裝在EP管里,用的時(shí)候現(xiàn)配,直接往培養(yǎng)板中加,沒必要一下子配那么多,尤其當(dāng)MTT變?yōu)榛揖G色時(shí)就不能再用了。MTT有致癌性,用的時(shí)候小心,有條件**帶那種透明的簿膜手套。配成的MTT需要無菌,MTT對菌很敏感;往96孔板加時(shí)不避光也沒有關(guān)系,畢竟時(shí)間較短,或者你不放心的時(shí)候可以把操作臺(tái)上的照明燈關(guān)掉。配制MTT時(shí)用PBS(ph=7.4)溶解。PBS配方:NaCl8g+KCl0.2g+Na2HPO41.44g+KH2PO40.24g調(diào)pH7.4,定容1L。普通MTT法實(shí)驗(yàn)步驟:1:接種細(xì)胞:用含10%胎小牛血清得培養(yǎng)液配成單個(gè)細(xì)胞懸液,以每孔1000-10000個(gè)細(xì)胞接種到96孔板,每孔體積200ul。2:培養(yǎng)細(xì)胞:同一般培養(yǎng)條件,培養(yǎng)3-5天(可根據(jù)試驗(yàn)?zāi)康暮鸵鬀Q定培養(yǎng)時(shí)間)。3:呈色:培養(yǎng)3-5天后,每孔加MTT溶液(5mg/ml用PBS配制,pH=7.4)20ul。繼續(xù)孵育4h,終止培養(yǎng),小心吸棄孔內(nèi)培養(yǎng)上清液,對于懸浮細(xì)胞需要離心后再吸棄孔內(nèi)培養(yǎng)上清液。每孔加150ulDMSO,振蕩10min,使結(jié)晶物充分溶解。4:比色:選擇490nm波長,在酶聯(lián)免疫監(jiān)測儀上測定各孔光吸收值,記錄結(jié)果,以時(shí)間為橫坐標(biāo),吸光值為縱坐標(biāo)繪制細(xì)胞生長曲線。藥物MTT法實(shí)驗(yàn)步驟貼壁細(xì)胞:1:收集對數(shù)期細(xì)胞,調(diào)整細(xì)胞懸液濃度,每孔加入100ul,鋪板使待測細(xì)胞調(diào)密度1000-10000孔,(邊緣孔用無菌PBS填充)。2:5%CO2,37℃孵育,至細(xì)胞單層鋪滿孔底(96孔平底板),加入濃度梯度的藥物,原則上,細(xì)胞貼壁后即可加藥,或兩小時(shí),或半天時(shí)間,但我們常在前一天下午鋪板,次日上午加藥。一般5-7個(gè)梯度,每孔100ul,設(shè)3-5個(gè)復(fù)孔。建議設(shè)5個(gè),否則難以反應(yīng)真實(shí)情況3:5%CO2,37℃孵育16-48小時(shí),倒置顯微鏡下觀察。4:每孔加入20ulMTT溶液(5mg/ml,即0.5%MTT),繼續(xù)培養(yǎng)4h。若藥物與MTT能夠反應(yīng),可先離心后棄去培養(yǎng)液,小心用PBS沖2-3遍后,再加入含MTT的培養(yǎng)液。5:終止培養(yǎng),小心吸去孔內(nèi)培養(yǎng)液。6:每孔加入150ul二甲基亞砜,置搖床上低速振蕩10min,使結(jié)晶物充分溶解。在酶聯(lián)免疫檢測儀OD490nm處測量各孔的吸光值。7:同時(shí)設(shè)置調(diào)零孔(培養(yǎng)基、MTT、二甲基亞砜),對照孔(細(xì)胞、相同濃度的藥物溶解介質(zhì)、培養(yǎng)液、MTT、二甲基亞砜)。懸浮細(xì)胞:1:收集對數(shù)期細(xì)胞,調(diào)節(jié)細(xì)胞懸液濃度1×106/ml,按次序?qū)ⅱ傺a(bǔ)足的1640(無血清)培養(yǎng)基40ul;②加ActinomycinD(有毒性)10ul用培養(yǎng)液稀釋(儲(chǔ)存液100mg/ml,需預(yù)試尋找**稀釋度,1:10-1:20);③需檢測物10ul;④細(xì)胞懸液50ul(即5×104cell/孔),共100ul加入到96孔板(邊緣孔用無菌水填充)。每板設(shè)對照(加100ml1640)2:置37℃,5%CO2孵育16-48小時(shí),倒置顯微鏡下觀察。3:每孔加入10ulMTT溶液(5mg/ml,即0.5%MTT),繼續(xù)培養(yǎng)4h。(懸浮細(xì)胞推薦使用WST-1,培養(yǎng)4h后可跳過步驟4),直接酶聯(lián)免疫檢測儀OD570nm(630nm校準(zhǔn))測量各孔的吸光值)4、離心(1000轉(zhuǎn)x10min),小心吸掉上清,每孔加入100ul二甲基亞砜,置搖床上低速振蕩10min,使結(jié)晶物充分溶解。在酶聯(lián)免疫檢測儀OD570nm(630nm校準(zhǔn))測量各孔的吸光值。5、同時(shí)設(shè)置調(diào)零孔(培養(yǎng)基、MTT、二甲基亞砜),對照孔(細(xì)胞、相同濃度的藥物溶解介質(zhì)、培養(yǎng)液、MTT、二甲基亞砜),每組設(shè)定3復(fù)孔。注意事項(xiàng):(1)選擇適當(dāng)?shù)眉?xì)胞接種濃度。(2)避免血清干擾:一般選小于10%的胎牛血清的培養(yǎng)液進(jìn)行試驗(yàn)。在呈色后盡量吸盡孔內(nèi)殘余培養(yǎng)液。(3)設(shè)空白對照:與試驗(yàn)平行不加細(xì)胞只加培養(yǎng)液的空白對照。其他試驗(yàn)步驟保持一致,Z后比色以空白調(diào)零。(4)MTT實(shí)驗(yàn)吸光度Z后要在0-0.7之間,超出這個(gè)范圍就不是直線關(guān)系。(5)用96孔板培養(yǎng)細(xì)胞做MTT測細(xì)胞活力,應(yīng)該加多少1640培養(yǎng)基,多少M(fèi)TT和DMSO合適根據(jù)書上說的加200ul1640,20ulMTT,150ulDMSO加DMSO之前要盡量去掉培養(yǎng)液,便于DMSO溶解甲顆粒進(jìn)行比色測定。(6)一般每孔4000個(gè)細(xì)胞為宜,既細(xì)胞濃度在20000個(gè)/ml,MTT加20ul,作用四小時(shí)后洗掉上清液,注意不要將甲洗掉,然后每孔加150ulDMSO,在脫色搖床上振蕩10分鐘,然后測吸光值。[詳細(xì)]
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蛋白質(zhì)溶液濃度測定方法
- 蛋白質(zhì)溶液濃度測定方法蛋白質(zhì)溶液濃度測定方法有多種,下述幾種方法可供選用。蛋白質(zhì)濃度的測定,往往用于計(jì)算純化方法的回收率的重要方法。一、雙縮脲法雙縮脲法是**個(gè)用比色法測定蛋白質(zhì)濃度的方法,至令仍廣泛采用。在需要快速,但不很準(zhǔn)確的測定中,常用此法。硫銨不干擾顯色,這對蛋白質(zhì)提純的早期價(jià)段是非常有利的。雙縮脲法的原理是Cu2+與蛋白質(zhì)的肽鍵,以及酪氨酸殘基絡(luò)合,形成紫藍(lán)色絡(luò)合物,此物在540nm波長處有Zda吸收。雙縮脲法常用于0.5g/L~10g/L含量的蛋白質(zhì)溶液測定。干擾物有硫醇,以及具有肽性質(zhì)緩沖液,如Tris、Good緩沖液等??捎贸恋矸ǔジ蓴_物,即用等體積10%冷的三氯醋酸沉淀蛋白質(zhì),然后棄去上清液,再用已知體積的1mNaOH溶解沉淀的蛋白質(zhì)進(jìn)行定量測定。二、Lowry法此法是雙縮脲法的進(jìn)一步發(fā)展。他的**步就是雙縮脲反應(yīng),即Cu++與蛋白質(zhì)在堿性溶液中形成絡(luò)合物,然后這個(gè)絡(luò)合物還原磷鉬磷-磷鎢酸試劑(福林-酚試劑),結(jié)果得到深藍(lán)色物。此法比雙縮脲法靈敏得多,適合于測定20mg/L~400mg/L含量的蛋白質(zhì)溶液。其干擾物質(zhì)與雙縮脲法相同,而且受他們的影響更大,硫醇和許多其他物質(zhì)的存在會(huì)使結(jié)果嚴(yán)重偏差。另外要注意的是,加入福林試劑時(shí)要特別小心,試劑只在酸性pH環(huán)境中才穩(wěn)定,上述提到的還原反應(yīng)只有在pH10時(shí)才發(fā)生,因此,福林試劑加入到堿性的Cu2+-蛋白質(zhì)溶液中時(shí),必須立刻攪拌,以使磷鉬酸-磷鎢酸試劑在未被破壞之前能有效地被Cu2+-蛋白質(zhì)絡(luò)合物所還原。三、紫外吸收法大多數(shù)蛋白質(zhì)在280nm波長處有特征的Zda吸收,這是由于蛋白質(zhì)中有酪氨酸,色氨酸和苯丙氨酸存在的緣故,因此,利用這個(gè)特異性吸收,可以計(jì)算蛋白質(zhì)的含量。如果沒有干擾物質(zhì)的存在,在280nm處的吸收可用于測定0.1~0.5mg/ml含量的蛋白質(zhì)溶液。部分純化的蛋白質(zhì)常含有核酸,核酸在260nm波長處有Zda吸收。有核酸時(shí),所測得的蛋白質(zhì)濃度必須作適當(dāng)校正,一般按下述公式粗略計(jì)算:是蛋白質(zhì)溶液在280nm波長處(光程1厘米)測得的光密度值。是蛋白質(zhì)溶液在260nm小波長處(光程1厘米)處所測得的光密度值。此方程是從烯醇酶(在酵母核酸存在時(shí))得出來的。因此,對其他蛋白質(zhì)和其他核酸不一定適用。由于各種蛋白質(zhì)所含芳香族氨基酸的量不同,因此,濃度為0.1%的各種蛋白質(zhì)在280nm處的消光系數(shù)()在0.5~2.5之間變化。所有的蛋白質(zhì)在230nm以下都有強(qiáng)吸收。例如,牛血清白蛋白的α0.1%在225nm和215nm處分別為5.0和11.7,而在280nm處測為0.58。在230nm以下的強(qiáng)吸收是由于肽鍵的存在,因此,此值對所有的蛋白質(zhì)都是一樣的。從215nm和225nm處的光密度之差可用于測定濃度為10μl/ml~100μl/ml的蛋白質(zhì)。蛋白質(zhì)濃度可以近似地由下式得到:光密度之差求得,這一公式是減去溶液中非蛋白質(zhì)成分產(chǎn)生的誤差。但是,蛋白質(zhì)之間的分子量差異比較大,因此,在比較幾種蛋白質(zhì)含量時(shí),必須作適當(dāng)?shù)男U?。由于蛋白質(zhì)的吸收峰常因pH改變而變化,所以在制作標(biāo)準(zhǔn)曲線時(shí),必須與樣品條件一致。相關(guān)產(chǎn)品如下:聯(lián)系方式上海索萊寶生物科技有限公司電話:021-6485566518018609966傳真:021-54261506郵編:200233地址:上海市欽江路15號(hào)14層郵箱:solarbio@126.com網(wǎng)址:www.shsolarbio.com優(yōu)質(zhì)試劑質(zhì)量放心價(jià)格Zdi為ZG生物產(chǎn)業(yè)做貢獻(xiàn)蛋白濃度測定相關(guān)產(chǎn)品特價(jià)促銷索寶特價(jià)另有其他常用生化試劑歡迎詢問【021-54100800】[詳細(xì)]
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2018-09-02 10:00
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飼料粗脂肪測定方法
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2018-09-12 10:00
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- 重鉻酸鉀法測定COd方法的適用范圍:用0.25mol/L的重鉻酸鉀溶液可測定大于50mg/L的Cod值,未經(jīng)稀釋的水樣的測定上限是700mg/L。用0.025mol/L的重鉻酸鉀溶液可測定5-50mg/L的Cod值。[詳細(xì)]
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2018-10-18 10:00
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2024-09-28 00:12
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