利用OPC技術(shù)實(shí)現(xiàn)異構(gòu)DCS之間數(shù)據(jù)通訊
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什么是利用OPC技術(shù)實(shí)現(xiàn)異構(gòu)DCS之間數(shù)據(jù)通訊,麻煩各位前輩給我說的通俗易懂一點(diǎn),謝謝了!
全部評(píng)論(3條)
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- lxxj201000 2011-09-07 00:00:00
- 簡單來說就是DCS之間通過opc協(xié)議傳輸數(shù)據(jù),現(xiàn)在也可以包括報(bào)警和事件,多數(shù)為通過寄存器地址訪問來實(shí)現(xiàn)
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- ansonhkdllm 2011-09-05 00:00:00
- 通俗一點(diǎn)咋說呢,OPC你知道是什么吧。 比如說DCS是一個(gè)很大很嚴(yán)實(shí)的房子,而OPC就是這個(gè)房子的一道可以比較容易進(jìn)出的門。OPC技術(shù)給技術(shù)人員提供了一種簡單通用的方法去訪問(讀/寫)DCS。 至于OPC技術(shù)實(shí)現(xiàn)異構(gòu)DCS之間通訊,我也不太明白,不過我想無非就是通過OPC技術(shù)實(shí)現(xiàn)DCS之間的互相訪問(讀/寫)吧。
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- 天下無第三者 2011-09-05 00:00:00
- 因?yàn)槊考业腄CS系統(tǒng)之間的通訊網(wǎng)絡(luò)都是不一樣的,同一個(gè)DCS系統(tǒng),控制級(jí)的網(wǎng)絡(luò)和管理級(jí)的網(wǎng)絡(luò)都不一樣,比如橫河的就有 V NET 、 ESB總線,還有遠(yuǎn)程I.O之間的ER總線。這樣的話,DCS系統(tǒng)與別的系統(tǒng)(PLC、DCS等)之間通信是存在很大的問題的,所以就出現(xiàn)了OPC技術(shù),OPC 是以微軟的 OLE/COM、DCOM技術(shù)為基礎(chǔ),定義了一套標(biāo)準(zhǔn)接口,從而提供自動(dòng)化和控制應(yīng)用、設(shè)備管理和設(shè)備之間的軟件應(yīng)用互操作性和設(shè)備的互換性。 簡單的說,就是在規(guī)定了一套標(biāo)準(zhǔn),每家DCS都要支持這個(gè),有單獨(dú)的OPC安裝軟件,然后就能各客戶/服務(wù)器間形成即插即用的簡單規(guī)范的鏈接關(guān)系,不同的客戶能夠訪問任意的數(shù)據(jù)源。而不是原來的RS485 \232 MODBUS PROFIBUS等各式各樣的接口以及協(xié)議,通過OPC這個(gè)接口,就能訪問對(duì)方的數(shù)據(jù)庫里面的數(shù)據(jù),可以調(diào)用數(shù)據(jù)等功能。非常的方便。 不知道你能不能理解,不能的話,還可以問我。
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Z近在Nature Protocols雜志上在線發(fā)表的一篇文章1介紹了利用NimbleGen序列捕獲技術(shù)進(jìn)行轉(zhuǎn)錄組定向測(cè)序,用于RNA研究中基因發(fā)現(xiàn)和表達(dá)定量。
RNAseq技術(shù)在基因表達(dá)研究中得到了廣泛的應(yīng)用,可對(duì)表達(dá)基因進(jìn)行無偏見的采樣。相比定量PCR可以對(duì)更廣泛的基因同步分析,相比芯片方法RNAseq測(cè)序結(jié)果準(zhǔn)確性也更高。然而,真核細(xì)胞的表達(dá)譜具有轉(zhuǎn)錄本數(shù)量眾多、可變剪切情況復(fù)雜,且表達(dá)量高低差異大的特點(diǎn)。RNAseq測(cè)序結(jié)果分散在整個(gè)基因組中,不同基因測(cè)序深度差異顯著,對(duì)轉(zhuǎn)錄水平偏低的轉(zhuǎn)錄本往往測(cè)序深度不足,為進(jìn)行特定基因的可變剪切體拼接及定量研究造成阻礙。
而序列捕獲技術(shù)通過寡合苷酸探針雜交,富集研究所感興趣的基因或基因組區(qū)段,實(shí)現(xiàn)了定向測(cè)序。將此技術(shù)與RNAseq結(jié)合,即對(duì)RNAseq的測(cè)序文庫先進(jìn)行序列捕獲實(shí)驗(yàn)富集感興趣的轉(zhuǎn)錄本,再進(jìn)行測(cè)序,實(shí)現(xiàn)定向RNAseq或RNA捕獲測(cè)序(CaptureSeq)。這一方法可以提高目標(biāo)轉(zhuǎn)錄本的測(cè)序深度,進(jìn)行靈敏的基因發(fā)現(xiàn)、有效的轉(zhuǎn)錄本組裝和準(zhǔn)確的基因表達(dá)定量。
文中介紹的實(shí)驗(yàn)步驟主要包括探針設(shè)計(jì)、捕獲測(cè)序和數(shù)據(jù)分析如轉(zhuǎn)錄本拼接及定量。實(shí)驗(yàn)選用了羅氏NimbleGen探針用于目標(biāo)捕獲。NimbleGen可同時(shí)生產(chǎn)2萬種探針,可覆蓋多達(dá)200Mb的基因組中的分散區(qū)域或連續(xù)的區(qū)域,可以應(yīng)對(duì)復(fù)雜的真核生物轉(zhuǎn)錄組。文章指出,在探針設(shè)計(jì)時(shí),僅針對(duì)目標(biāo)轉(zhuǎn)錄本的部分序列設(shè)計(jì)探針,通過這些探針即可捕獲全長轉(zhuǎn)錄本,也可發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)錄本中的新外顯子。當(dāng)需對(duì)特定剪切方式的轉(zhuǎn)錄本進(jìn)行定向研究時(shí),可在探針設(shè)計(jì)包括連接兩個(gè)外顯子片段的探針,專門捕獲這些異構(gòu)體。
此外,實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)了用于質(zhì)控的探針。質(zhì)控探針包括:1. 非轉(zhuǎn)錄的基因間區(qū)的探針,以排除gDNA污染;2. 其他可能造成實(shí)驗(yàn)室污染如大腸桿菌等的序列捕獲探針,以排除實(shí)驗(yàn)室污染;3. 數(shù)個(gè)質(zhì)控基因的探針,可用于進(jìn)行測(cè)序前qPCR富集分析,或用于數(shù)據(jù)分析參數(shù)的測(cè)試;4. 針對(duì)摻入樣本的ERCC RNA設(shè)計(jì)的探針。 ERCC RNA Spike-in standards由92個(gè)in vitro轉(zhuǎn)錄的轉(zhuǎn)錄本組成,表達(dá)量跨越一個(gè)106的范圍,這一些標(biāo)準(zhǔn)品被摻入到Z初的RNA樣品中進(jìn)行捕獲測(cè)序,用于判斷測(cè)序量是否充足,以及計(jì)算捕獲off-target rate。另外,將各轉(zhuǎn)錄本獲得的測(cè)序深度,與ERCC RNA Spike-in standards的測(cè)序深度比較,可以推算出樣本中各轉(zhuǎn)錄本的數(shù)量。文章作者指出,這個(gè)方法應(yīng)用于轉(zhuǎn)錄水平較低的基因的富集,富集率與基因數(shù)量相關(guān),如1000個(gè)隨機(jī)選擇的基因預(yù)期55倍富集效率。
5微克的總RNA約可生成250ng cDNA文庫,可將多個(gè)樣本的文庫混合后根據(jù)Roche NimbleGen的實(shí)驗(yàn)手冊(cè)進(jìn)行捕獲實(shí)驗(yàn)?;旌喜东@的實(shí)驗(yàn)方案可以對(duì)大量樣本進(jìn)行低成本的測(cè)序。測(cè)序后的分析步驟包括比對(duì)、拼接、去除非目標(biāo)序列、新基因(外顯子)發(fā)現(xiàn)、定量等。
通過這一實(shí)驗(yàn),可以對(duì)樣本中特定基因的表達(dá)進(jìn)行研究。該方法既RNASeq相比其他表達(dá)譜研究方法的優(yōu)勢(shì),又可以進(jìn)行有目的性的、多樣本的研究。尤其在對(duì)于表達(dá)水平中低等的轉(zhuǎn)錄本研究中,可以更好地拼接全長轉(zhuǎn)錄本、發(fā)現(xiàn)新基因以及定量分析。
1. Tim R Mercer, Michael B Clark, Joanna Crawford, Marion E Brunck, Daniel J Gerhardt, Ryan J Taft, Lars K Nielsen, Marcel E Dinger, John S Mattick. Targeted sequencing for gene discovery and quantification using RNA CaptureSeq. Nature Protocols. 9, 9891009 (2014) doi:10.1038/nprot.2014.058
僅用于科研,不用于診斷
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