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- 伍祖加 2016-10-12 00:00:00
- 我之前用SWATH定量,效果還不錯,其他的兩種定量沒有做過,不好說
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- 飯桶877 2016-10-12 00:00:00
- SILAC是僅僅適合細胞層次的蛋白質(zhì)組定量,組織的定量需要摸索或者前人已經(jīng)摸索的模式,中途測試新組織難度較大,極易失敗,細胞層次的SILAC培養(yǎng)費用高昂,不適合做商業(yè)化。MRM和SWATH都是目標(biāo)蛋白質(zhì)組相關(guān)的定量模式,但是SWATH可以完成數(shù)千種蛋白的定量,準(zhǔn)確度極高,通量遠高于MRM,對于亞細胞結(jié)構(gòu)、細菌、真菌、細胞分泌物等樣本,SWATH效果非常好,
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- jscuan123 2016-10-12 00:00:00
- 目前主流的定量蛋白質(zhì)組方法有5種,分別是iTRAQ、SILAC、MRM(MRMHR)、label-free和SWATH 。其中Z流行的是iTRAQ定量蛋白質(zhì)組方法,該方法不依賴樣本,可以做任意樣本的總蛋白質(zhì)的差異定量,而且定量準(zhǔn)確,這個層次上label-free雖然也可以做任意樣本,但是定量準(zhǔn)確度難以保障。SILAC是僅僅適合細胞層次的蛋白質(zhì)組定量,組織的定量需要摸索或者前人已經(jīng)摸索的模式,中途測試新組織難度較大,極易失敗,細胞層次的SILAC培養(yǎng)費用高昂,不適合做商業(yè)化。MRM和SWATH都是目標(biāo)蛋白質(zhì)組相關(guān)的定量模式,但是SWATH可以完成數(shù)千種蛋白的定量,準(zhǔn)確度極高,通量遠高于MRM,對于亞細胞結(jié)構(gòu)、細菌、真菌、細胞分泌物等樣本,SWATH效果非常好,當(dāng)然,SWATH價格相對較高。SWATH本身對物種沒有偏向性,也是目標(biāo)蛋白定量的一種,定量結(jié)果準(zhǔn)確,可以和MRM媲美,發(fā)文章更具有說服力,但是一次能定量只能達到2000多個蛋白
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熱門問答
- iTRAQ、SILAC和SWATH等相比,我更應(yīng)該選擇哪一種定量的方法呢?
- iTRAQ,定量蛋白組學(xué),SILAC,雙向電泳,質(zhì)譜,蛋白測序,求助
- [iTRAQ,定量蛋白組學(xué),SILAC,雙向電泳,質(zhì)譜,蛋白測序,求助]哪位大俠在公司做過iTRAQ定量蛋白組學(xué)實驗,能給我些建議嗎?哪家公司好,信用高?和公司商談哪方面需要注意的?萬分感謝!
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- 一文知曉PCR,定量PCR,數(shù)字PCR方法選擇
從1985年至今的30多年時間里,PCR分析經(jīng)歷了三代技術(shù)的發(fā)展。DY代傳統(tǒng)PCR技術(shù),采用瓊脂糖凝膠電泳的方法對PCR產(chǎn)物進行定性分析。第二代熒光定量PCR技術(shù),通過在PCR反應(yīng)體系中加入熒光基團,利用熒光信號的積累實時監(jiān)控PCR進程,ZH用Cq值對基因進行定量分析。第三代數(shù)字PCR技術(shù),通過將PCR反應(yīng)液進行有限稀釋,實現(xiàn)核酸分子的單分子擴增,ZZ采取終點法檢測陽性微滴的熒光信號,有熒光信號的微滴判讀為 1;沒有熒光信號的微滴判讀為 0,因此該技術(shù)被稱為數(shù)字PCR。
PCR技術(shù)在不斷地蛻變卻從未淡出我們的視野,如今已經(jīng)滲透到分子生物學(xué)領(lǐng)域的各種研究層面。尤其在今年大流行疾病中,展現(xiàn)了PCR技術(shù)的強大之處。那在科學(xué)研究中,我們該如何選擇傳統(tǒng)PCR 、熒光定量 PCR與數(shù)字 PCR呢?
首先我們要清楚,三代PCR技術(shù)所有的基礎(chǔ)源于PCR反應(yīng)的基本原理和PCR反應(yīng)的3個重要階段,分別是指數(shù)期、線性期和平臺期。
指數(shù)期
指數(shù)期內(nèi),每個循環(huán)PCR產(chǎn)物量大約增加1倍(假定 100%反應(yīng)效率),該階段的擴增反應(yīng)具有高度特異性和精確度。
線性期(高變異性)
隨著PCR反應(yīng)體系成分的消耗,其中的一個或者多種成分限制反應(yīng),導(dǎo)致反應(yīng)開始減緩,并且每個循環(huán)的PCR 產(chǎn)物不再加倍。
平臺期
反應(yīng)停止,不再產(chǎn)生更多的產(chǎn)物。因為每個樣品具有不同的反應(yīng)動力學(xué),所以每個反應(yīng)將在不同的時間點進入平臺期,平臺期內(nèi)可以看到這些差異。
傳統(tǒng) PCR
傳統(tǒng)PCR通過瓊脂糖凝膠電泳對PCR終產(chǎn)物進行分析(圖2),它的局限性就在于只能做定性分析。在圖3中,3個反應(yīng)孔含有相同量的 DNA模板,但到達平臺期后產(chǎn)生的熒光信號卻不同,說明擴增產(chǎn)物的量存在不同(反應(yīng)動力學(xué)變化所致)。這也表明了傳統(tǒng)PCR平臺期測量時結(jié)果存在變異,產(chǎn)出的DNA量不一定能反映最初情況,所以無法進行定量。
熒光定量 PCR
同樣在圖3中,發(fā)現(xiàn)在指數(shù)期內(nèi),3個反應(yīng)孔的擴增曲線完全重合,說明指數(shù)期內(nèi)進行檢測將更加精確,可實現(xiàn)更加準(zhǔn)確的定量。閾值線是擴增產(chǎn)物熒光強度超過背景時的一個熒光強度值,樣品達到此熒光強度值所經(jīng)過的循環(huán)數(shù)稱為Cq值。通過比較未知濃度的樣品與一系列標(biāo)準(zhǔn)品的Cq值,可以精確測定未知反應(yīng)中的模板 DNA數(shù)量。
數(shù)字 PCR
數(shù)字 PCR 是通過將樣本DNA隨機分布至獨立的反應(yīng)單元中,每個反應(yīng)單元中包含或者不包含1個或多個拷貝的目標(biāo)分子,所有獨立的反應(yīng)單元進行平行擴增后,對每個反應(yīng)單元的陰性或者陽性熒光信號進行檢測并進行統(tǒng)計學(xué)分析,就可以計算出原始樣本的拷貝數(shù),無需參考標(biāo)準(zhǔn)品或內(nèi)源性對照品,也不需要標(biāo)準(zhǔn)曲線。
傳統(tǒng)PCR 、熒光定量 PCR與數(shù)字 PCR的選擇
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參考文獻:
1. Sykes PJ, Neoh SH, Brisco MJ, Hughes E, Condon J, Morley AA. Quantitation of targets for PCR by use of limiting dilution. Biotechniques. 1992;13(3):444-449.
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5. Whale AS, Huggett JF, Cowen S, et al. Comparison of microfluidic digital PCR and conventional quantitative PCR for measuring copy number variation. Nucleic Acids Res. 2012;40(11):e82.
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