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- tt1627com 2009-07-20 00:00:00
- http://www.xkb1.com/huaxue/index.html 新課標diyi網>初中化學課件試題
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- babymeehan 2009-07-21 00:00:00
- (1)固體藥品:①用鑷子或藥匙??;②粉狀用紙槽送;③塊狀滑向管底。 (2)液體藥品:①瓶塞倒放;②標簽對手心;③瓶口緊挨試管口。 二、稱量 稱量時把稱量物放在左盤,砝碼放在右盤。用托盤天平有兩種方式,一種是先放稱量物,后加砝碼,這適于稱取一種未知質量的物質;另一種是先放砝碼,后加稱量物,這適于稱取一種一定質量的物質。采用后一種方式,當固體稱量物只缺很少時,應一只手持藥匙,用另一只手輕拍持藥匙手的手腕,小心振動藥匙,加足藥量。 三、研磨 在實驗中,有時取用的藥品顆粒較大,不便于進行化學反應時,就需要使用研缽,用研磨的方法將大塊的固體物質處理成為小塊或細粉狀物質。實驗室中粉碎固體,大塊堅硬的可以用鑄鐵臼和杵。一般物料和化學純以上試劑只能使用瓷研缽(或玻璃研缽)和杵。在研磨時應注意以下幾點:①易燃易爆物不能研磨。研磨兩種物質時,一般應分別研磨。②應根據藥品的多少選用大小不同的研缽。每次研磨時所裝藥品不能超過研缽容積的 1/3。 四、溶解 固體物質一般可在燒杯中溶解,實驗中應根據需配制溶液的體積大小來選擇燒杯,一般所選擇的燒杯容積比所配溶液的體積大一倍左右為宜。 五、過濾 一貼,二低,三靠 過濾時應注意:濾紙的邊緣應比漏斗稍低,并緊貼漏斗內壁,用蒸餾水潤濕,中間不要有氣泡;將過濾器放好并調整高度,使下端的管口靠緊燒杯內壁,使濾液沿燒杯壁流下順倒時,使液體沿著玻璃棒流下,液面要低于濾紙的邊緣。如果濾液仍然渾濁,應該把濾液再過濾一次,直到濾液澄清。 六、蒸發(fā) 蒸發(fā)時應注意:加入蒸發(fā)皿的液體不應超過蒸發(fā)皿容器的2/3;在加熱過程中,用玻璃棒不斷攪動,防止由于局部溫度過高,造成液滴飛濺;接近蒸干前(即蒸發(fā)皿中出現(xiàn)較多量的固體時)應停止加熱,利用余熱把溶劑蒸發(fā)完;取下未冷卻的蒸發(fā)皿時應把它放在石棉網上,而不能直接放在實驗臺上。 七、儀器裝配與拆卸 裝配儀器時遵循先下后上,先左后右的原則。拆卸時正好相反。此外還要考慮一些特殊情況:如制O2時先拆導管后拆燈(防止倒吸);用H2還原CuO時,先拆燈后停止通H2(防止Cu又被氧化)等。 八、氣密性的檢查 把連接儀器末端的導管插入水中,雙手緊握始端儀器,如燒瓶、試管外壁,如不漏氣,末端導管口應有氣泡冒出;若夏天,或中間連接儀器過多,可在始端稍加熱。然后移開雙手(或熱源),儀器冷卻后,導管口處應上升一段水柱。如有多個出氣口的復雜裝置,檢查氣密性時,應用水封住其他出口,只留一個出氣口,如上所述步驟進行檢驗。 九、給試營里的固體加熱 鐵夾應夾持在離試管口大約1/3處,管口略向下傾斜,先進行預熱,然后再把燈焰固定在放藥品的部位加熱。 十、氣體的制備和收集 (l)裝固體的試管口要略向下傾斜,防止生成水或濕存水流至試管底致使試管破裂;(2)先均勻加熱,后固定在放藥品處加熱;(3)用排水法收集,停止加熱前,應先把導氣管撤離水面,才能熄滅酒精燈,防止水槽中的水倒吸入試管里,使試管破裂。 十一、洗滌儀器 (1)實驗室洗滌儀器的一般程序是:①用去污粉或洗滌劑擦洗;②用自來水沖洗;③用蒸餾水潤洗2~3次,即稱“一擦二沖三潤”。 (2)當玻璃器皿沾有難溶物時,一般先選用某種試劑使其溶解,然后再用水洗。 (3)玻璃儀器洗凈的標志是用水洗后器壁上附著的水均勻,既不聚成滴也不成股流下。 十二、容量瓶的使用 (1)構造:細頸、梨形的平底玻璃瓶,瓶口配有磨口玻璃塞或塑料塞,瓶上標有溫度(20℃)、容量和刻度線。 (2)用途:用于準確配制一定物質的量濃度的溶液。 (3)注意事項: ①使用前首先要檢查是否完好,瓶口處是否漏水。 ②不能作反應器,不可加熱,瓶塞不可互換,不宜存放溶液。 ③配制溶液時,必須要等溶液的溫度恢復到室溫后再將溶液轉移到容量瓶中,因為玻璃的膨脹系數會隨溫度的改變而發(fā)生變化。在容量瓶上一般標有使用溫度,如果待配制的溶液的溫度過高或過低,都會影響所配制溶液的準確濃度。 ④容量瓶不能先用試劑潤洗,而滴定管要先用試劑潤洗2遍。如果滴定管不用試劑潤洗而其中又有少量蒸餾水,當加入試劑后,會使試劑的濃度變小。容量瓶若用試劑潤洗,會在容量瓶中存有少量試劑,使配制的溶液的濃度變大。 十三、制取氧化銅 (1) 實驗步驟: (2) 實驗原理 CuSO4+2NaOH= Cu(OH)2↓+ Na2SO4;Cu(OH)2= CuO+H2O 十四、制取氧氣 (1)實驗步驟:①檢查氣密性;②裝入藥品;③加熱,收集;④先撤出導氣管,再停止加熱;⑤檢驗。 (2)實驗探索:MnO2可作為KClO3分解制氧的催化劑,通過探索,CuO、Fe2O3等也能作為該實驗的催化劑,這說明同一反應可能選用不同的物質作催化劑。其差異只是表現(xiàn)在催化作用的效果上。 自 我 測 試 1.如何稱取5克膽礬? 答: 用托盤天平有兩種方式:一種是先放稱量物,后加砝碼或撥動游碼,這適于稱取一種未知質量的物質;另一種是先放砝碼或撥動游碼,后加稱量物,這適于稱取一種一定質量的物質。稱取5克膽礬應采用后一種方式。當固體稱量物只缺很少時,應一只手持藥匙,用另一只手輕拍持藥匙的手腕,小心振動藥匙,加足藥量。 2.簡述用KClO3制取并收集、驗證氧氣的實驗步驟。 答:⑴裝配實驗裝置,檢查裝置的氣密性; ⑵稱取一定質量的KClO3,與少量MnO2粉末混合均勻后裝入大試管中,用帶有導管的單孔橡膠塞塞緊管口; ⑶加熱,用排水法收集一試管氧氣; ⑷先撤出導氣管,再停止加熱; ⑸用帶火星的木條伸入試管中檢驗收集的氧氣。 3.通過探索CuO作KClO3分解制O2反應的催化劑的實驗,你能得到什么啟迪? 答:這說明同一反應可以選用不同的物質作催化劑,其差異只是表現(xiàn)在催化作用的效果上。 4.在使用容量瓶配制溶液時,為什么必須要等溶液溫度恢復到室溫后,再將溶液轉移到容量瓶中? 答: 根據“熱脹冷縮”原理,熱溶液體積偏大,則所加水偏少,導致所配溶液濃度偏高。 5瓶配制溶液時,為什么要洗滌燒杯多次?洗滌液應如何處理
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ELISA實驗要點:降低ELISA背景的四大要素
在ELISA試劑盒操作中,我們都認為ELISA實驗的原理似乎很簡單,不外乎固定抗原,添加一抗、二抗和底物,間中夾雜著洗滌和封閉。然而,即使是平淡無奇的洗滌和封閉,如果做得不太好,也有可能毀了整個實驗。在實驗結束時,我們是否能獲得有意義的信息,這在很大程度上取決于結果的信噪比。背景噪音會影響您對結果的判斷。如何降低ELISA的背景,本生技術小編詳解。
一、洗滌很重要
洗滌步驟看似很無聊,其實很重要,因為如果未結合的材料(如非特異結合的抗體或檢測試劑)殘留在微孔板中,那么它會增加背景噪音。如有必要,可增加洗滌液中的鹽濃度,這會阻止非特異結合反應。如果背景過高,而您懷疑洗滌不夠時,可以嘗試增加洗滌次數。
二、封閉更關鍵
封閉液的作用是讓不相關的蛋白占據微孔板中潛在的結合位點。這就降低了可產生信號的抗體非特異結合的機會。您當然也希望抗體只與目的蛋白結合吧。如果您的背景過高,懷疑封閉不充分,那么您可以嘗試使用更高濃度的封閉液,或適當延長封閉時間。
如果您一直被背景問題所困擾,那么也許您該花些時間來優(yōu)化封閉液。這可能需要時間,但也是值得的。目前主要有兩種類型的封閉液:蛋白和非離子型去污劑。您使用的類型須取決于多個因素,包括微孔板的表面試劑、吸附的抗原、您的抗體和檢測試劑。好的封閉液應降低非特異性結合,但它不應當與抗原、抗體或檢測試劑發(fā)生相互作用。
常用的非離子型去污劑是Tween-20。這種封閉液便宜、穩(wěn)定,在去除洗滌過程中的一些非特異結合上很有用。但它們只在存在時起作用,因為很容易被洗掉。因此所有洗滌液中也必須添加封閉液。請勿使用高濃度(正常濃度為0.01-0.1%),它會降低特異結合,產生假陰性。另一個選擇是使用蛋白和非離子型去污劑這兩種封閉液,后者可協(xié)助洗滌過程中的封閉。
蛋白封閉液則有所不同。它們與開放位點結合并封閉,同時穩(wěn)定與微孔板結合的抗原分子。常用的蛋白封閉液包括牛血清白蛋白(BSA)、脫脂奶粉、正常血清和魚明膠。血清組分的內在多樣性可使它有效攔截許多不同類型的分子相互作用。不過,它的缺點在于能與Protein A和IgG抗體相互作用。解決這個問題的一種方法是使用雞或魚的正常血清。
三、抗體濃度須優(yōu)化
我們通常會follow師兄師姐留下來的操作步驟,但是如果試劑稍有不同,則可能需要優(yōu)化抗體的量。記住,非特異的抗體結合會增加背景。為了防止這一點,切勿使用過多的一抗或二抗。
四、檢測試劑要適量
另一點也很顯而易見:切勿使用過多的檢測試劑。如果濃度過高,或者未正確稀釋,則會導致高背景。也不要顯色過度,如有必要,優(yōu)化一下何時應加入終止液。
如果您的ELISA試劑盒操作中不幸地遇到了高背景,那么也無需太擔心,依次查看ELISA系統(tǒng)中的組分,并排除可能存在的問題。悉心優(yōu)化,相信很快就會有漂亮的結果。
ELISA試劑盒本生一直視質量控制為企業(yè)的生命,追求企業(yè)競爭力的不斷提升。公司在經營中始終秉承:遵紀守法,嚴于律己,寬仁以待,敢于承擔的企業(yè)精神作為標準,以過硬的質量和優(yōu)良的服務來維護和拓展市場,較大限度的滿足客戶的需求。與客戶的共贏,是我們的發(fā)展目標。本生!您信任的合作伙伴。我們愿與您真誠合作,共創(chuàng)美好的未來。
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