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高液相色譜分析法測定一個標本要多長時間

gongelh31103 2017-02-12 21:45:28 519  瀏覽
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參與評論

全部評論(1條)

  • 韶霸瘓2q58 2017-02-13 00:00:00
    看你的標本里被測組分的多少以及被測組分與柱子的親和度,如果組分多,為了保證分離效果良好通常需要較長的洗脫時間,這樣分析時間就比較長半小時到2小時都有可能。如果是單組份,又很容易分離,且很容易洗脫,那么幾分鐘就出來了。

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熒光顯微鏡標本要如何制作

 熒光顯微鏡是以紫外線為光源, 用以照射被檢物體, 使之發(fā)出熒光, 然后在顯微鏡下觀察物體的形狀及其所在位置。熒光顯微鏡用于研究細胞內(nèi)物質(zhì)的吸收、運輸、化學物質(zhì)的分布及定位等。

熒光顯微鏡標本要如何制作?

熒光顯微鏡標本制作方法一共分為5個步驟:
(一) 玻片及蓋玻片(Slide and Coverslips)
(二)組織切片 (Tissue Sections)
(三)細胞培養(yǎng)法 (Cell Culture Preparation)
(四) 涂抹法或捺壓法(Smear and Impression Preparation)
(五) 固定 (Fixation)

熒光顯微鏡標本制作步驟

(一) 玻片及蓋玻片(Slide and Coverslips)
玻片及蓋玻片品質(zhì)必須很好而沒有熒光,玻片厚度≦1.0mm 者便可用,玻片需要清洗,必須以中性清潔劑洗凈,再浸于含有3%HCl 之乙醇12~ 24 小時,然后再儲存于純酒精。要用時,以清潔紗布擦凈或火焰烘干。用完后可浸于水中,移去封埋物,再經(jīng)清潔劑及重酪酸-硫酸混合物*處理。
*重酪酸一硫酸混合物之配法:
1.粗制重酪酸鉀300 gm
2.20% 硫酸水溶液3000 ml
3.使用琺瑯質(zhì)或陶質(zhì)容器,先放入20% 硫酸水溶液,然后緩緩加入粗制重酪酸鉀,以玻璃棒攪拌,此時會發(fā)熱,待冷卻后使用。目前已有處理好的玻片出售,使用上非常方便。

(二) 組織切片 (Tissue Sections)
組織切片愈薄愈好(4μ),如果切片太厚,則可能自體及非特異熒光增加,目前都用冷凍切片機(Cryostat) 來切,冷凍切片機包括冰凍柜(Refrigerated Cabinet),溫度在0℃~-30℃ 之間,切片機(Microtome) 放在里面,將組織在-20℃ 冰凍10 分鐘,就可以切,切下之薄片,以玻片捺下后在室溫急速干燥。制備好之切片必須盡可能馬上固定及染色。如果切片必須儲放短時間( 約1 周),則固定后密封儲放于-70℃,要染色時,切片必需回溫到室溫方啟開。

(三) 細胞培養(yǎng)法 (Cell Culture Preparation)
細胞培養(yǎng)法一般用蓋玻片在組織培養(yǎng)盤( 例如24 孔)或培養(yǎng)在玻璃片(Chamber Slide) 上,再和普通接種病毒一樣,接種可疑病材乳劑,培養(yǎng)數(shù)天,取出,干燥、固定、水洗,再用標示抗體染色以檢查特異熒光。

(四) 涂抹法或捺壓法(Smear and Impression Preparation)
所用玻片需很薄,一般用蓋玻片代用,將所要檢查之病材,如血液、組織液或其他病材,在玻片上涂抹或捺壓,涂抹或捺壓片在室溫用吹風機或電風扇( 以冷風吹干),以甲醇或丙酮固定,放于密封標本箱于-20℃ 備染或馬上染色。

(五) 固定 (Fixation)
除了使組織固定于玻片外,另一方面亦可助抗原-抗體復(fù)合物之形成,例如把脂質(zhì)溶解,使抗體抗原較易反應(yīng)。一般用100% Methanol 在室溫作用2 分鐘,或丙酮于-20℃ 下10 分鐘來固定微生物抗原及病毒。

注意事項
一般染色標本,應(yīng)立即觀察,因當時熒光Z顯著;若不能馬上觀察,須儲存于干燥盒(Polyethylene Bag) 內(nèi),有時在0~5℃ 儲存,可保存一個月左右,仍可呈現(xiàn)特異熒光。


(來源:廣州市明美光電技術(shù)有限公司)

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