- 2025-01-10 10:52:26單細(xì)胞分離儀
- 單細(xì)胞分離儀是一款專門用于從復(fù)雜生物樣本中分離出單個細(xì)胞的儀器。它采用先進的分離技術(shù)和原理,能夠高效、準(zhǔn)確地實現(xiàn)細(xì)胞的單分散,為后續(xù)的單細(xì)胞分析、培養(yǎng)及研究提供基礎(chǔ)。該儀器廣泛應(yīng)用于生命科學(xué)、醫(yī)學(xué)研究及細(xì)胞治療等領(lǐng)域,具有操作簡便、分離效率高及細(xì)胞活性保持好等特點。單細(xì)胞分離儀是細(xì)胞研究中的重要工具,為科研人員提供了強大的技術(shù)支持。
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- 單細(xì)胞分選分離系統(tǒng)—龍卷風(fēng)系列“HW-TORNADO“
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單細(xì)胞分離儀問答
- 2023-03-07 22:09:15高通量單細(xì)胞力譜測定!多功能單細(xì)胞顯微操作技術(shù)助力單細(xì)胞力學(xué)研究
- 單程細(xì)胞具有復(fù)雜生物學(xué)性質(zhì),它們通過細(xì)胞外基質(zhì)ECM形成緊密的細(xì)胞與基質(zhì)細(xì)胞與細(xì)胞連接,諸如上皮細(xì)胞通過這種特殊的鏈接方式構(gòu)成了屏障層保護人體免受外界損傷。因此細(xì)胞之間以及細(xì)胞基底的粘附力測定對于研究細(xì)胞粘附蛋白的機制有著重要意義。使用力學(xué)工具測量細(xì)胞間以及細(xì)胞與基質(zhì)之間的粘附力始終不是一件容易的事情。首先,由于細(xì)胞與基質(zhì)的作用力僅為nN級別,因此需要力學(xué)精度較高的設(shè)備才能夠測量,而且在這其中較為適合的工具為原子力顯微鏡(AFM)。原子力顯微鏡能夠提供納米級別的操作精度并可測量從pN~nN范圍的力譜。但是受制于AFM探針本身的限制,需要借助修飾手段才能夠讓細(xì)胞與探針固定到一起,這個過程十分繁瑣,并且由于需要大量手工操作很難實現(xiàn)高通量的測量。而不同的細(xì)胞由于細(xì)胞異質(zhì)性使得要想確定粘附力需要較多樣本才能獲得相對準(zhǔn)確的值,無法實現(xiàn)高通量測量直接限制了原子力探針在細(xì)胞粘附力上的應(yīng)用。而多功能單細(xì)胞顯微操作FluidFM技術(shù)的出現(xiàn)改變了這一現(xiàn)狀,它使用特殊的中空探針能夠輕松地通過負(fù)壓抓取細(xì)胞,取得和AFM近似精度的數(shù)據(jù),無需在探針上進行任何修飾,不會改變細(xì)胞表面的任何通路,從而能夠得到接近細(xì)胞原生的數(shù)據(jù)。在實驗結(jié)束后能夠通過正壓快速丟棄用過的細(xì)胞,具備很高的自動化,能夠快速測量細(xì)胞粘附力。使用FluidFM對細(xì)胞操作的基本流程 FluidFM在粘附力測量上具備顯著優(yōu)勢。如圖所示,F(xiàn)luidFM能夠通過負(fù)壓將細(xì)胞吸附到原子力探針的末端,通過高精度位移臺的控制將細(xì)胞從基底上分離,并且同時記錄FD曲線。通過FD曲線能夠獲得最大粘附力Fmax和粘附能量Emax。通過高度自動化的控制系統(tǒng)能夠在短時間內(nèi)測量大量細(xì)胞粘附力,評估細(xì)胞群體分布以及細(xì)胞間差異,并且可有效避免傳統(tǒng)粘附力測量因準(zhǔn)備時間過長而錯過最佳測量時間導(dǎo)致的細(xì)胞粘附力改變,得到更為精準(zhǔn)的結(jié)果。近期,Agoston等人使用多功能單細(xì)胞顯微操作系統(tǒng)FluidFM實現(xiàn)了高通量細(xì)胞粘附力測量,對同種細(xì)胞不同區(qū)以及不同細(xì)胞之間的粘附力進行測量和比較。作者首先對Vero和Hela細(xì)胞在不同狀態(tài)下的粘附力進行了測量和比較,總共測量了214個細(xì)胞。通過比較明膠涂層上處于單個細(xì)胞、孤島狀細(xì)胞、致密連接細(xì)胞以及單層細(xì)胞上游離細(xì)胞之間的粘附力,能夠明顯觀測到Vero細(xì)胞處于致密連接的細(xì)胞粘附力最大,大概在750 nN左右,隨著細(xì)胞單細(xì)胞層的稀疏,細(xì)胞粘附力有所下降,而處于細(xì)胞層頂部的細(xì)胞粘附力最低僅為50 nN左右。這一點充分說明上皮細(xì)胞能夠在細(xì)胞之間形成緊密的連接,而處于細(xì)胞層外的細(xì)胞則幾乎沒有粘附力。而對于HeLa這樣的腫瘤細(xì)胞測量的結(jié)果卻顯示出了截然不同的結(jié)果,處于不同狀態(tài)的細(xì)胞有著近似的粘附力,基本都在200 nN左右,這與處于單個游離上皮細(xì)胞的粘附力十分接近,表明HeLa細(xì)胞在不同環(huán)境下仍然具有較高遷徙能力。使用FluidFM對不同區(qū)域細(xì)胞的FD曲線測定結(jié)果和對比 通過對這兩種細(xì)胞的最大粘附力、最大粘附能量、最大拉伸距離和細(xì)胞接觸面積進行統(tǒng)計分析可以發(fā)現(xiàn),HeLa腫瘤細(xì)胞在粘附力和粘附能量上均有所降低,但是當(dāng)HeLa細(xì)胞形成了單層后,兩者區(qū)別不大。對比Hela和Vero在不同生長狀態(tài)下的最大粘附力、最大粘附能量、粘附拉伸距離和粘附面積。再進一步對Vero與HeLa細(xì)胞最大粘附力與距離和接觸面積進行對比,依然可以得到與單獨比較粘附力相同的結(jié)果,并且最大能量與細(xì)胞接觸面積的比值中也存在著類似的結(jié)果。由此可見腫瘤細(xì)胞通過降低自身粘附力從而獲得了更好的遷移能力。對不同狀態(tài)Vero和A549之間的粘附力/粘附距離、粘附力/粘附面積、粘附能量/粘附面積 總結(jié) 細(xì)胞粘附力測定在細(xì)胞生命科學(xué)研究中起著至關(guān)重要的作用,然而傳統(tǒng)手段中有著各種各樣的局限性,主要原因是缺乏一種有效抓取細(xì)胞并進行力學(xué)測定的手段?,F(xiàn)如今FluidFM技術(shù)在細(xì)胞粘附力測定中的應(yīng)用,使得研究者們有了一種能夠有效、低損的方式抓取細(xì)胞,配合原子力顯微鏡精確測量的特性,真正意義上做到精準(zhǔn)、無損、快速的測量單細(xì)胞粘附力,幫助研究者尋找細(xì)胞粘附力與細(xì)胞生命發(fā)展、腫瘤細(xì)胞轉(zhuǎn)移之間的關(guān)系。 【參考文獻】[1] A. Sancho, M. B. Taskin, L. Wistlich, P. Stahlhut, K. Wittmann, A. Rossi & J. Groll. Cell Adhesion Assessment Reveals a Higher Force per Contact Area on Fibrous Structures Compared to Flat Surfaces. ACS Biomater. Sci. Eng. 2022, 8, 2, 649–658.[2] P.W. Doll, K. Doll, A. Winkel, R. Thelen, R. Ahrens, M. Stiesch & A.E. Guber. Influence of the Available Surface Area and Cell Elasticity on Bacterial Adhesion Forces on Highly Ordered Silicon Nanopillars. ACS Omega. 2022, 7, 21, 17620–17631.[3] Sankaran, S. Jaatinen, L. Brinkmann, J. Zambelli, T. V?r?s, J. Jonkheijm, P. Cell adhesion on dynamic supramolecular surfaces probed by fluid force microscopy-based single-cell force spectroscopy. ACS Nano 2017, 11, 3867–3874.[4] Sancho, A. Vandersmissen, I. Craps, S. Luttun, A. Groll, J. A new strategy to measure intercellular adhesion forces in mature cell-cell contacts. Sci. Rep. 2017, 7, 46152.[5] Ines, Lüchtefeld. Alice, Bartolozzi. Julián M. M. Oana, Dobre. Michele, Basso. Tomaso, Zambelli. Massimo, Vassalli. Elasticity spectra as a tool to investigate actin cortex mechanics. J Nanobiotechnol. 2020, 18, 147.[6] Dehullu, J. Valotteau, C. Herman-Bausier, P. Garcia-Sherman, M. Mittelviefhaus, M. Vorholt, J. A. Lipke, P. N. Dufrene, Y. F. Fluidic force microscopy demonstrates that homophilic adhesion by Candida albicans Als proteins is mediated by amyloid bonds between cells. Nano Lett. 2019, 19, 3846–3853.[7] Mittelviefhaus, M. Müller, D. B. Zambelli, T. Vorholt, J. A. A modular atomic force microscopy approach reveals a large range of hydrophobic adhesion forces among bacterial members of the leaf microbiota. ISME J. 2019, 13, 1878–1882.[8] F. Weigl, C. Blum, A. Sancho & J. Groll. Correlative Analysis of Intra- versus Extracellular Cell Detachment Events vis the Alignment of Optical Imaging and Detachment Force Quantification. Adv. Mater. Technol. 2022, 2200195.【相關(guān)產(chǎn)品】 多功能單細(xì)胞顯微操作系統(tǒng)- FluidFM OMNIUM:http://m.sdczts.cn/zt2203/product_386418.html
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- 2023-02-24 11:28:18高通量、自動化單細(xì)胞力譜測定!多功能單細(xì)胞顯微操作全新技術(shù)助力單細(xì)胞力學(xué)研究
- 研究現(xiàn)狀單程細(xì)胞具有復(fù)雜生物學(xué)性質(zhì),它們通過細(xì)胞外基質(zhì)ECM形成緊密的細(xì)胞與基質(zhì)細(xì)胞與細(xì)胞連接,諸如上皮細(xì)胞通過這種特殊的鏈接方式構(gòu)成了屏障層保護人體免受外界損傷。因此細(xì)胞之間以及細(xì)胞基底的粘附力測定對于研究細(xì)胞粘附蛋白的機制有著重要意義。使用力學(xué)工具測量細(xì)胞間以及細(xì)胞與基質(zhì)之間的粘附力始終不是一件容易的事情。首先,由于細(xì)胞與基質(zhì)的作用力僅為nN級別,因此需要力學(xué)精度較高的設(shè)備才能夠測量,而且在這其中較為適合的工具為原子力顯微鏡(AFM)。原子力顯微鏡能夠提供納米級別的操作精度并可測量從pN~nN范圍的力譜。但是受制于AFM探針本身的限制,需要借助修飾手段才能夠讓細(xì)胞與探針固定到一起,這個過程十分繁瑣,并且由于需要大量手工操作很難實現(xiàn)高通量的測量。而不同的細(xì)胞由于細(xì)胞異質(zhì)性使得要想確定粘附力需要較多樣本才能獲得相對準(zhǔn)確的值,無法實現(xiàn)高通量測量直接限制了原子力探針在細(xì)胞粘附力上的應(yīng)用。多功能單細(xì)胞顯微操作FluidFM技術(shù)多功能單細(xì)胞顯微操作FluidFM技術(shù)的出現(xiàn)改變了這一現(xiàn)狀,它使用特殊的中空探針能夠輕松地通過負(fù)壓抓取細(xì)胞,取得和AFM近似精度的數(shù)據(jù),無需在探針上進行任何修飾,不會改變細(xì)胞表面的任何通路,從而能夠得到接近細(xì)胞原生的數(shù)據(jù)。在實驗結(jié)束后能夠通過正壓快速丟棄用過的細(xì)胞,具備很高的自動化,能夠快速測量細(xì)胞粘附力。使用FluidFM對細(xì)胞操作的基本流程FluidFM在粘附力測量上具備顯著優(yōu)勢。如圖所示,F(xiàn)luidFM能夠通過負(fù)壓將細(xì)胞吸附到原子力探針的末端,通過高精度位移臺的控制將細(xì)胞從基底上分離,并且同時記錄FD曲線。通過FD曲線能夠獲得最 大粘附力Fmax和粘附能量Emax。通過高度自動化的控制系統(tǒng)能夠在短時間內(nèi)測量大量細(xì)胞粘附力,評估細(xì)胞群體分布以及細(xì)胞間差異,并且可有效避免傳統(tǒng)粘附力測量因準(zhǔn)備時間過長而錯過最 佳測量時間導(dǎo)致的細(xì)胞粘附力改變,得到更為精 準(zhǔn)的結(jié)果。
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- 2022-12-19 17:27:20單細(xì)胞懸液制備儀對膝關(guān)節(jié)滑液樣品組織的懸液制備
- 此次實驗主要是為膝關(guān)節(jié)滑液組織制備單細(xì)胞,讓我們一起來看看凈信單細(xì)胞制備儀是如何制備膝關(guān)節(jié)滑液組織單細(xì)胞懸液,對其樣品前處理效果和懸液效果如何? 實驗地點:上海**大學(xué)醫(yī)學(xué)院東區(qū)單細(xì)胞中心 實驗儀器:單細(xì)胞懸液制備儀(溫控型)JX-CKSM-6WK 樣品前處理制備實驗步驟: 1、打開儀器電源開關(guān),將儀器界面中的加熱點開預(yù)熱一段時間持恒溫。 2、將組織稍微剪切成小塊,放入凈信2ml研磨管中?! ?、加入凈信消化酶旋上蓋子,上下微微晃動將其組織和消化酶均勻混合?! ?、將混合好的研磨管放入加熱模塊中,再將研磨管放入熱板中,蓋上蓋子?! ?、啟動設(shè)備,待設(shè)備停止運行后打開儀器蓋子,取出樣品管 6、將樣品管中的液體和剩下的組織一起倒入過濾管中,再加入終止液后得到渾濁的液體,即單細(xì)胞懸液。 樣品處理前后效果圖: 顯微鏡下的細(xì)胞呈現(xiàn): 實驗樣品組織制備注意事項: 1、消化酶和終止液均需要在冷凍環(huán)境下保存 2、消化酶解凍時需在常溫條件下解凍,不可以放入水浴或者其他加熱儀器中解凍,溫度升高對酶的活性會有很大的影響。
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- 2023-05-20 12:59:12測定單克隆細(xì)菌群體中單細(xì)胞對抗生素的敏感性
- 鑒于抗菌素耐藥性的出現(xiàn),了解細(xì)胞群體對抗生素反應(yīng)的異質(zhì)性至關(guān)重要。因為藥物可以施加選擇壓力,導(dǎo)致抗性表型的出現(xiàn)。迄今為止,無論是整體方法還是單細(xì)胞方法都無法將單細(xì)胞易感性的異質(zhì)性與人群對抗生素的反應(yīng)聯(lián)系起來。在這里,我們提出了一個平臺,通過使用錨定微流體滴和圖像和數(shù)據(jù)分析管道,測量單個大腸桿菌細(xì)胞在不同環(huán)丙沙星濃度下形成小菌落的能力。微流控結(jié)果與抗生素敏感性的經(jīng)典微生物學(xué)測量結(jié)果進行了基準(zhǔn)測試,顯示池微流控芯片與重復(fù)的批量測量結(jié)果之間的一致性。此外,單細(xì)胞形成菌落的實驗可能性用于提供概率抗生素敏感性曲線。除了概率觀點外,微流控格式還可以隨著時間的推移對大量單個細(xì)胞的形態(tài)特征進行表征。該管道可用于比較不同菌株對具有不同作用機制的抗生素的反應(yīng)。
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- 2021-05-21 16:54:28凈信單細(xì)胞懸液制備儀|制備小鼠大腦單細(xì)胞懸液
- 實驗?zāi)康模褐苽湫∈蟠竽X的單細(xì)胞懸液實驗儀器:單細(xì)胞懸液制備儀,研磨套裝管,濾管,移液槍,培養(yǎng)皿,鑷子,手術(shù)刀實驗試劑:PBS液,凈信消化酶,終止液操作步驟:1、開機預(yù)熱,打開加熱模塊1,加熱模塊22、取活體組織后,放入PBS液中去紅,然后取20-50mg(約小米粒大小),再分成若干等分3、把消化酶用移液器加入研磨套裝管中,將加滿消化酶的離心管放入預(yù)熱模塊中預(yù)熱幾分鐘4、將處理好的組織用鑷子轉(zhuǎn)移到加滿消化酶的離心管中5、將裝滿消化酶和組織的離心管放置到加熱板中,選擇25分鐘程序,開始運行6、程序結(jié)束取出離心管,將消化好的組織液轉(zhuǎn)移到過濾管中,即得到一管單細(xì)胞懸液儀器介紹:上海凈信單細(xì)胞制備儀JX-CKSM-6WK(6通道加熱型)是一種集成金屬浴消化與溫和剪切組織的新一代細(xì)胞懸液制備設(shè)備,應(yīng)用于流式細(xì)胞術(shù)/單細(xì)胞測序/原代細(xì)胞培養(yǎng)等實驗,具有起始組織量小,時間短,細(xì)胞得率高,細(xì)胞活性高的特點。采用國際DIN方法設(shè)計,低噪音,使用方便,性能穩(wěn)定。應(yīng)用領(lǐng)域:腫瘤研究 心血管研究 干細(xì)胞研究 免疫研究 神經(jīng)科學(xué)研究產(chǎn)品應(yīng)用:單細(xì)胞測序(Single-Cell RNASeq)多色流式分析(Multicolor Flow Cytometry)質(zhì)譜流式細(xì)胞計數(shù)(Mass Cytometry)原代細(xì)胞分離培養(yǎng)(Primary Cell Isolation And Culture)細(xì)胞ZLCAR-T
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